Immunologia dla wakcynologów – cz. II. Odpowiedź immunologiczna na szczepionki

Data utworzenia:  10.01.2018
Aktualizacja: 03.04.2017
dr n. med. Karolina Bukowska-Strakova, dr n. med. Anna Szaflarska
Zakład Immunologii Klinicznej, Katedra Immunologii Klinicznej i Transplantologii, Instytut Pediatrii Uniwersytetu Jagiellońskiego Collegium Medicum, Zakład Immunologii Klinicznej Uniwersyteckiego Szpitala Dziecięcego w Krakowie

Skróty: IFN – interferon, IL – interleukina, MHC – główny układ zgodności tkankowej, SNP – polimorfizm pojedynczych nukleotydów, TLR – receptor Toll-podobny, TNF – czynnik martwicy nowotworów, WZW – wirusowe zapalenie wątroby

Odpowiedź immunologiczna organizmu na szczepienia ochronne zależy od wielu czynników. Jak przedstawiono w I części artykułu (p. Med. Prakt. Szczepienia 4/2016, s. 55–62 – przyp. red.),1 podstawową rolę odgrywa rodzaj antygenu szczepionkowego oraz jego immunogenność. Odpowiedź immunologiczna zależy również od cech osoby szczepionej, tj. od wieku, płci, rasy, wcześniejszej ekspozycji na antygeny (w trakcie infekcji bądź szczepienia), obecności matczynych przeciwciał, stanu klinicznego (choroby towarzyszące) oraz wielu czynników środowiskowych. Bardzo istotną rolę pełnią także czynniki genetyczne.1
Odpowiedź immunologiczna rozwija się od początku życia płodowego, przez okres dzieciństwa i życie dorosłe (w tym okres ciąży).2 U noworodka zarówno układ odporności wrodzonej, jak i nabytej jest niedojrzały – dojrzewa i nabiera cech pamięci immunologicznej w czasie rozwoju osobniczego. Następnie w okresie starości dochodzi do upośledzenie funkcji komórek układu immunologicznego. Zmiany te wiążą się z ryzykiem wystąpienia różnych infekcji oraz odmienną odpowiedzią na szczepienia ochronne w zależności od okresu życia.
W wytworzeniu wrodzonej i nabytej odpowiedzi immunologicznej uczestniczy ponad 1600 genów,3 które mają kluczowe znaczenie dla przeżycia w środowisku zewnętrznym. Jednak zaraz po urodzeniu układ odpornościowy jest niedojrzały i dopiero ekspozycja na liczne czynniki zewnętrzne umożliwia jego rozwój w dalszych okresach życia, aby następnie ulec inwolucji w wieku podeszłym.

Rozwój układu odpornościowego we wczesnym okresie życia

W życiu płodowym zadaniem układu immunologicznego jest tolerancja matczynych alloantygenów. Po urodzeniu ekspozycja na antygeny środowiskowe (z których wiele pochodzi z komensalnych bakterii jelitowych) prowadzi do szybkiej zmiany zadań układu odpornościowego, odpowiednich dla wczesnego dzieciństwa.

Wrodzony układ odpornościowy

Wrodzony układ odpornościowy jest odpowiedzialny za tzw. pierwszą linię obrony, chroniąc organizm przed chorobotwórczymi drobnoustrojami. Do komórek tej części układu immunologicznego zalicza się neutrofile, monocyty, makrofagi i komórki dendrytyczne. Oczywiście komórki te współpracują z komórkami układu odporności nabytej. Powstają one i dojrzewają w czasie życia płodowego, ale w różnych etapach, a funkcja wszystkich składników odporności wrodzonej u noworodków jest słaba w porównaniu z późniejszymi okresami życia.
Obecność dojrzałych neutrofili u płodu można stwierdzić już pod koniec I trymestru ciąży, a gwałtowne zwiększenie ich liczby, indukowane czynnikami stymulującymi wzrost kolonii granulocytarnych (granulocyte colony stimulating factor – G-CSF), obserwuje się na krótko przed porodem. W ciągu kilku dni ich liczba powraca do wcześniejszego poziomu (tzw. pierwsze skrzyżowanie immunologiczne). Jednak w tym okresie życia krążące granulocyty wykazują słabe właściwości bakteriobójcze, słabą odpowiedź na bodźce zapalne, zmniejszoną przyczepność do komórek śródbłonka i bardzo ograniczone właściwości chemotaktyczne.4 W związku z niepełną funkcją neutrofili noworodki są narażone na większe ryzyko zakażeń bakteryjnych. Dotyczy to zwłaszcza wcześniaków, u których upośledzenie funkcji granulocytów jest jeszcze bardziej widoczne, co dodatkowo zmniejsza stężenie IgG i dopełniacza w surowicy.5
U wcześniaków i noworodków klasyczne monocyty i makrofagi są również niedojrzałe. Komórki te charakteryzują się zmniejszoną ekspresją TLR4* oraz zaburzeniami wrodzonych szlaków sygnałowych,6-9 co z kolei przyczynia się do mniejszej produkcji cytokin niż u dorosłych. Wszystko to odzwierciedla się w upośledzonej naprawie tkanek, zaburzeniu fagocytozy potencjalnych drobnoustrojów chorobotwórczych oraz małej produkcji biologicznie czynnych cząsteczek. U wcześniaków i noworodków urodzonych w fizjologicznym terminie porodu obserwuje się zmniejszoną liczbę makrofagów płucnych, która jednak zwiększa się do poziomu typowego dla dorosłych już w ciągu kilku dni po urodzeniu.10
W porównaniu z krwią obwodową dzieci i dorosłych, krew pępowinowa zawiera mniej mieloidalnych komórek dendrytycznych (mDC). Dodatkowo u noworodków komórki te wykazują mniejszą ekspresję powierzchniowych cząsteczek antygenów głównego układu zgodności tkankowej (MHC) klasy II, CD80 i CD86 w porównaniu z komórkami mDC u dorosłych.11 Wydzielają one także mniejsze stężenia inferleukiny (IL) 12 w odpowiedzi na bodźce aktywujące odporność wrodzoną.12 W konsekwencji, u noworodków aktywacja limfocytów Th1 i limfocytów T cytotoksycznych CD8+ jest mniejsza niż u dorosłych, co koreluje ze zwiększoną podatnością na zakażenia wywołane przez wirusy, Mycobacterium tuberculosis i bakterie z rodzaju Salmonella. Z drugiej strony noworodkowe mDC, po stymulacji receptora TLR4 wydzielają cytokiny prozapalne promujące odpowiedź immunologiczną typu Th17 (prozapalna frakcja limfocytów T pomocniczych) w stężeniu podobnym jak u dorosłych.13
U dorosłych plazmacytoidalne komórki dendrytyczne (pDC) uwalniają duże stężenia interferonu (IFN) typu I (do których należy IFNα i ß) w odpowiedzi na stymulację receptorów Toll-podobnych TLR7 i TLR9. Jednak noworodkowe pDC, chociaż wykazują ekspresję TLR7 i TLR9 na poziomie zbliżonym do dorosłych, na zakażenia różnymi wirusami odpowiadają znacznie ograniczoną produkcją IFNα i IFNß.14 W związku z tym, wrodzona odpowiedź immunologiczna na wirusy, takie jak wirus syncytium nabłonka oddechowego (RSV), wirus opryszczki (Herpes simplex) i cytomegalii, jest u noworodków słabsza niż u dorosłych.
Funkcją komórki NK (natural killer) u dorosłych jest powstrzymanie replikacji wirusa i jego ekspansji jeszcze przed uruchomieniem mechanizmów odporności swoistej.15 Ich funkcję regulują m.in. receptory hamujące, rozpoznające antygeny zgodności tkankowej HLA-A, B, C i E, co umożliwia tolerancję własnych tkanek. U płodu w późniejszym okresie ciąży funkcja cytotoksyczna komórek NK systematycznie się zwiększa, jednak w momencie porodu nadal stanowi zaledwie połowę poziomu aktywności stwierdzanej u dorosłych. Noworodkowe komórki NK są mniej wrażliwe na aktywację przez IL-2 i IL-15, i produkują ograniczone stężenia IFN-γ. Jednak próg ich aktywacji jest niższy, co zapewnia pewną ochronę przeciwwirusową.16
Do obrony organizmu i rozwoju stanu zapalnego konieczne są trzy niezależne ścieżki aktywujące układ dopełniacza. Składowe dopełniacza umożliwiają opsonizację drobnoustrojów, wykazują działanie chemotaktyczne dla komórek odporności wrodzonej, pośredniczą w lizie komórek docelowych oraz wspomagają produkcję przeciwciał. U noworodków stężenia prawie wszystkich składowych dopełniacza w surowicy są o 10–80% mniejsze niż u dorosłych,17 przy dodatkowo ich zmniejszonej aktywności biologicznej. Stężenie składowych dopełniacza zwiększa się po urodzeniu – niektóre składowe osiągają stężenia takie jak w surowicy dorosłych w ciągu 1. miesiąca życia (np. czynnik B), a stężenie pozostałych zwiększa się wolniej.17 Ponieważ u niemowląt stężenie immunoglobulin jest małe, funkcje efektorowe dopełniacza zależą głównie od alternatywnych i lektynowych szlaków aktywacji wywoływanych przez polisacharydy i endotoksyny.
Reasumując, w momencie narodzin wrodzony układ odpornościowy jest wyciszony – jest to związane z koniecznością tolerancji matczynych antygenów jeszcze w czasie życia płodowego, a także znacznym stresem komórkowym związanym z przebudową tkanek, jaka zachodzi w tym okresie rozwoju. Jednak z drugiej strony powoduje to, że noworodki, a zwłaszcza wcześniaki, są podatne na zakażenia bakteryjne i wirusowe.

Adaptacyjny układ odpornościowy

Grasica, narząd, w którym dojrzewają limfocyty T, jest największa po porodzie i w ciągu pierwszych lat życia. Dojrzałe limfocyty T CD4 lub CD8 (tzw. limfocyty pojedynczo dodatnie) mogą być wykrywane w grasicy już w 15. tygodniu życia płodowego, a przed porodem obecne są również w znacznej ilości we krwi obwodowej.18,19 Jednak noworodkowe limfocyty T znacznie się różnią od komórek osób dorosłych, co wynika z faktu, że w życiu płodowym ekspozycja na obce antygeny jest w dużej mierze ograniczona do alloantygenów matczynych. Limfocyty T powstające w życiu płodowym pełnią inną rolę niż limfocyty T u dorosłych. Na przykład, mimo że płodowe naiwne limfocyty T CD4+ silnie odpowiadają na stymulację alloantygenami, po aktywacji mają tendencję do różnicowania do regulatorowych limfocytów T (Treg) poprzez wpływ transformującego czynnika wzrostu (TGF) ß,20 a więc do aktywnego promowania tolerancji immunologicznej na rozpoznany antygen. Limfocyty Treg stanowią około 3% całkowitej liczby limfocytów T CD4+ we krwi obwodowej noworodka.22 Taki poziom utrzymuje się przez pewien czas,22 co sprawia, że odpowiedź immunologiczna we wczesnym okresie życia jest ukierunkowana na profil przeciwzapalny.23
Aktywacja antygenowa płodowych lub noworodkowych limfocytów T powoduje przekierunkowanie reakcji immunologicznej w stronę odporności typu Th2 (humoralnej),24 co jest wzmocnione przez noworodkowe komórki dendrytyczne oraz status epigenetyczny (modyfikacje biochemiczne regulujące ekspresje genów).25,26 W bardzo wczesnym okresie życia adaptacyjna odporność komórkowa limfocytów T charakteryzuje się zatem tolerancją immunnologiczną, słabym rozpoznaniem alloantygenów i słabą reakcją na obce antygeny.
U noworodków, oprócz konwencjonalnych limfocytów T rozpoznających antygeny peptydowe prezentowane przy udziale klasycznych cząsteczek MHC, obecne są również populacje limfocytów T wykazujących ekspresję receptora komórek T (TCR) typu γδ oraz limfocyty T z receptorem TCR typu αß, przypominające komórki odporności wrodzonej. Obejmują one czynnościowo kompetentne klasyczne komórki NKT (iNKT), które szybko wytwarzają IFN, limfocyty T związane z błoną śluzową (mucosa-associated invariant T – MAIT),27 a także niedawno opisane naiwne limfocyty T wydzielające interleukinę 8 (CXCL8), które stanowią pomost pomiędzy odpornością wrodzoną a adaptacyjną (nabytą).28 Limfocyty MAIT powstają w grasicy, ale ich końcowe różnicowanie może zachodzić w błonach śluzowych płodu jeszcze przed kolonizacją przez drobnoustroje. Limfocyty T produkujące CXCL8 wykazują ważne funkcje efektorowe u noworodków, ponieważ mają one zdolność do aktywacji przeciwbakteryjnej neutrofili i limfocytów T typu γδ. Wydają się być szczególnie aktywne w błonach śluzowych wcześniaków i noworodków urodzonych w fizjologicznym terminie porodu, choć ich liczba zmniejsza się wraz z wiekiem. W przeciwieństwie do dorosłych, u których repertuar receptorów TCR γδ jest ograniczony, noworodkowe krążące limfocyty T γδ wykazują znaczną różnorodność kombinacji tego receptora.28 Po krótkiej poliklonalnej stymulacji limfocyty T γδ mogą wytwarzać znaczną ilość IFN-γ, co kompensuje niedojrzałość klasycznej odpowiedzi typu Th1 w czasie infekcji u noworodków.29,30
W obrębie limfocytów B można wyróżnić dwa rodzaje komórek: B1 oraz B2 powstające na odrębnych ścieżkach rozwoju.31 Limfocyty B1 spontanicznie wydzielają przeciwciała IgM o małym powinowactwie i ograniczonym zakresie swoistości względem antygenów (w tym polisacharydów bakteryjnych), rzadziej podlegają mutacjom somatycznym (p. Med. Prakt. Szczepienia 4/2016, s. 55–62 – przyp. red.) i stanowią pierwszą linię obrony.32 Komórki B1 wydzieją IL-10 i TGF-ß, przez co wspierają powstawanie odpowiedzi typu Th2 (humoralnej). W momencie narodzin limfocyty B1 stanowią około 40% limfocytów B krwi obwodowej i taka wartość utrzymuje się przez kilka pierwszych miesięcy życia.33 Konwencjonalne limfocyty B (opisywane jako limfocyty B2) powstają ze wspólnego progenitora limfoidalnego (CLP) CD34 + i mogą generować wytwarzanie szerokiego repertuaru swoistych immunoglobulin. Limfocyty B występują głównie we wtórnych narządach limfatycznych i w szpiku kostnym, gdzie tworzą humoralną odpowiedź odporności nabytej.
Znaczna część odpowiedzi humoralnej, łącznie z odpowiedzią humoralną przeciwko białkom i polisacharydom bakteryjnym, a także szczepionkowym antygenom polisacharydowym skoniugowanym z białkiem, zależą od pomocy komórek T. Pomoc ta, jak opisano w I części artykułu, opiera się na interakcji między receptorem TCR, CD28 i CD40 na limfocytach Th2 lub grudkowych limfocytach T pomocniczych z odpowiednimi cząsteczkami na antygenowo swoistych limfocytach B, tj. z kompleksem HLA-peptyd, CD80 i CD40/86. Jednak noworodkowe limfocyty B wykazują niski poziom ekspresji tych cząsteczek, co ogranicza ich zdolność do odpowiedzi immunologicznej.34 Ponadto niski poziom ekspresji receptora dla fragmentu C3d dopełniacza (CD21) utrudnia odpowiedź na kompleksy polisacharyd–dopełniacz.35 Wszystkie te cechy przyczyniają się do słabej odpowiedzi humoralnej z niepełnym przełączaniem klas immunoglobulin,36 pomimo że limfocyty B pamięci są wytwarzane.37 Limfocyty B u noworodków i niemowląt do 2. miesiąca życia, w porównaniu z dorosłymi, rzadziej ulegają somatycznym hipermutacjom, co ogranicza proces dojrzewania powinowactwa przeciwciał.38 Wreszcie komórki podścieliska szpiku kostnego we wczesnym okresie życia nie wspierają długoterminowego przeżycia plazmablastów i różnicowania do komórek plazmatycznych, co skutkuje możliwością gwałtownego zmniejszenia się stężenia przeciwciał IgG wytworzonych po szczepieniu, czego nie obserwuje się u starszych dzieci i dorosłych.39 W związku z tym skuteczność nabytej części układu odpornościowego w odpowiedzi na antygeny T-zależne u noworodków jest znacznie zmniejszona w porównaniu ze starszymi dziećmi i dorosłymi. To fizjologiczne upośledzenie odporności nabytej jest szczególnie istotne dla programów szczepień. Postępy w zrozumieniu podstaw fizjologicznych odrębności układu immunologicznego wieku noworodkowego i wczesnoniemowlęcego oraz wiedza o działaniu nowych adiuwantów umożliwia projektowanie preparatów szczepionkowych oraz strategii szczepień lepiej dostosowanych do wczesnego okresu życia. U dzieci z urodzeniową masą ciała >1500 g odpowiedź immunologiczna jest podobna do odpowiedzi u noworodków urodzonych o czasie.
Warto zaznaczyć, że nie ma dowodów na zwiększone ryzyko reakcji niepożądanych po szczepieniach wykonywanych u dzieci urodzonych przedwcześnie.

Od wieku dziecięcego do dorosłości

Mimo zachodzących procesów dojrzewania odporności wrodzonej i nabytej małe dziecko jest narażone na zakażenia wieloma chorobotwórczymi wirusami, bakteriami, grzybami czy pasożytami. Wcześniej, gdy dzieci były niedożywione, poziom higieny był niski i brakowało kompleksowych szczepień, śmiertelność niemowląt i małych dzieci była duża. W 1900 roku w Wielkiej Brytanii umieralność niemowląt wyniosła 140/1000 żywo urodzonych noworodków, a do 2000 roku zmniejszyła się do 7/1000.40 Zmniejszenie umieralności w tej grupie wiekowej było proporcjonalnie większe w porównaniu z innymi grupami wiekowymi.41 Za wynik ten odpowiada głównie skuteczniejsze zapobieganie zakażeniom oraz ich kontrola.
Układ odpornościowy stopniowo dojrzewa w okresie niemowlęcym. Dla ochrony przed wieloma chorobami zakaźnymi największe znaczenie mają matczyne przeciwciała IgG przenoszone przez łożysko, a w dalszej kolejności IgA w mleku wytworzone przez matkę w czasie wcześniejszej odpowiedzi na zakażenie. Matka może przekazać wystarczającą ilość przeciwciał, aby chronić swoje dziecko, nawet jeśli przebyła infekcję 20–30 lat wcześniej. Kiedy przeciwciała te zanikają, dzieci stają się bardziej podatne na infekcje, choć w tym czasie zaczyna dojrzewać już ich własny wrodzony i adaptacyjny system immunologiczny. Obecnie ryzyko wystąpienia groźnych zakażeń jest znacznie mniejsze dzięki szczepieniom ochronnym, które stymulują odpowiedź immunologiczną dojrzewającego układu odpornościowego. Niemniej jednak u dzieci nadal mogą wystąpić zakażenia wirusowe, bakteryjne i pasożytnicze, które muszą być zwalczane i kontrolowane przez układ immunologiczny. Oprócz zwalczania bieżącej infekcji, taka stymulacja antygenowa umożliwia również rozwój pamięci immunologicznej.42,43 Tak więc, w miarę upływu czasu ochrona zapewniana przez odpowiedź immunologiczną zwiększa się i zakażenia u młodych dorosłych występują rzadziej. Wraz z rozwojem dziecka repertuar antygenowno swoistych limfocytów jest kształtowany przez współistniejące zakażenia oraz szczepienia ochronne. Zarówno pełnoobjawowe infekcje, jak i te o przebiegu subklinicznym są wystarczające do stymulacji lub wzmocnienia odpowiedzi immunologicznej.Humoralna odpowiedź immunologiczna oraz ze strony limfocytów T jest bardzo silna. Niektóre choroby zakaźne wieku dziecięcego występują tylko raz w życiu, a ochrona immunologiczna przed wywołującymi je drobnoustrojami utrzymuje się przez cały okres życia osobniczego.
Wiele przewlekłych infekcji przebiega bezobjawowo, jednak wywołują one reakcje odpornościowe. Przykładem jest wirus cytomegalii (CMV), wirus Epsteina i Barr (EBV) oraz prątki gruźlicy (Mycobacterium tuberculosis).44 EBV, CMV i M. tuberculosis wywołują silną odpowiedź limfocytów T CD4 i CD8. Odpowiedź limfocytów T CD8, swoistych dla CMV, może skutkować oligoklonalną ekspansją limfocytów T, które mogą stanowić nawet 10% krążących limfocytów T CD8. Limfocyty te kontrolują wirusa, a ich deplecja, na przykład poprzez leczenie immunosupresyjne, może powodować objawowe zakażenie z powikłaniami.
Poza drobnoustrojami chorobotwórczymi i szczepionkami noworodek ma kontakt z innymi antygenami. W macicy płód rozwijał się w sterylnym środowisku, a następnie zostaje gwałtownie narażony na wiele drobnoustrojów.45 Pierwsza ważna ekspozycja na działanie bakterii ma miejsce w trakcie przechodzenia przez kanał rodny, a następnie w momencie kontaktu z otoczeniem jamy ustnej, skóry i dróg oddechowych. Od tego momentu narażenie na drobnoustroje jest ciągłe. Wiele bakterii kolonizujących jelito i inne błony śluzowe jest niezbędnych dla prawidłowego funkcjonowania, w tym trawienia pokarmu oraz pozyskania niezbędnych składników odżywczych. Wpływają one również na rozwój układu odpornościowego.46

Rola mikrobioty

Około 20% wszystkich limfocytów rezyduje w jelicie,47 gdzie mają kontakt z wieloma obcymi antygenami. Jelitowe komórki immunologiczne monitorują obszar będący potencjalnym źródłem groźnych infekcji. Bakterie jelitowe stymulują rozwój odpowiedzi w kierunku Th17,48 limfocytów Treg49 oraz limfocytów T pamięci.50-52 W chwili urodzenia prawie wszystkie limfocyty T wykazują ekspresję glikoproteiny CD45RA, cząsteczki typowej dla naiwnych limfocytów T, które nigdy wcześniej nie spotykały antygenu. Pośród limfocytów T CD4+CD45RA- stosunkowo liczną populację stanowią limfocyty Treg. Z czasem ich liczba zmniejsza się, a liczba komórek pamięci typu Th1, Th17 i Th2 stopniowo zwiększa się, aż ich poziom zrównuje się z liczbą naiwnych limfocytów T.53 Chociaż niektóre limfocyty T pamięci mogły powstać na skutek zakażenia danym drobnoustrojem lub w wyniku szczepienia, wiele z nich rozwinęło się po kontakcie z mikrobiotą, nie tylko w jelitach, ale również w układzie oddechowym lub w skórze. Te ostatnie limfocyty T pamięci mogą odpowiadać na kolejne zakażenia poprzez reakcję krzyżową.50,54,55 Na przykład, u osób dorosłych, które nigdy nie były narażone na kontakt z wirusem HIV-1, mogą być obecne limfocyty T pamięci posiadające geny VDJ kodujące receptory antygenowe limfocytów T, które mogą reagować z peptydami wirusa HIV, prezentowanymi na powierzchni komórki przez cząsteczki MHC. Te limfocyty T prawdopodobnie zostaną pobudzone w razie zakażenia HIV,50,52 podobnie jak w przypadku innych drobnoustrojów.54 Reaktywność krzyżowa wynika z faktu, że epitopy rozpoznawane przez limfocyty T, prezentowane w rowkach MHC klasy I lub II, są złożone z krótkich sekwencji aminokwasów (8–15). W obrębie sekwencji białkowych mikrobioty istnieją liczne sekwencje aminokwasowe identyczne lub bardzo podobne do peptydowych epitopów wirusów, takich jak z HIV-1.50,52 To zjawisko sprawia, że u osoby, która nie miała kontaktu z danym wirusem, stwierdza się obecność limfocytów T pamięci swoistych dla patogenu.
Segmentowe nitkowate bakterie jelitowe (np. bifidobakterie) są niezbędne do rozwoju limfocytów Th17,49 a bakterie z rodzaju Clostridium stymulują powstawanie kolonii limfocytów Treg.56,57 U myszy hodowanych w warunkach jałowych obserwuje się m.in. mniejszą liczbę kępek Peyera, mniejsze grudki chłonne i nieprawidłowe ośrodki rozmnażania w tkance limfatycznej jelita cienkiego.58 Takie defekty można wyeliminować w ciągu kilku dni poprzez umieszczenie w klatce myszy z prawidłową florą jelitową.58,59 Dane uzyskane na modelu zwierzęcym potwierdzają fakt, że mikrobiota jest konieczna do prawidłowego rozwoju zarówno limfocytów B, jak i T pamięci.
Podobne mechanizmy zachodzą w czasie rozwoju limfocytów B. Węglowodanowe antygeny grup krwi ABO reagują krzyżowo z antygenami bakterii jelitowych i stymulują odpowiedź humoralną klasy IgM. Przeciwciała przeciwko epitopom białka gp41 wirusa HIV-1 mogą być krzyżowo rozpoznawane przez limfocyty B rozpoznające białka Escherichia coli.60

Pamięć immunologiczna

Utrzymanie długoterminowej pamięci limfocytów B jest ciekawym zjawiskiem, zważywszy że okres półtrwania in vivo immunoglobuliny IgG wynosi tylko około 25 dni.61 Komórki plazmatyczne wytwarzające przeciwciała, które powstają podczas reakcji immunologicznej, migrują do szpiku kostnego, gdzie mogą żyć bardzo długo. Ponadto może również dochodzić do ciągłej regeneracji limfocytów B pamięci dzięki ciągłemu kontaktowi z antygenem i pomocniczymi limfocytami T. Niektóre antygeny mogą się utrzymywać w węzłach chłonnych przez wiele miesięcy dzięki związaniu ich przez grudkowe komórki dendrytyczne.62 W niedawno przeprowadzonych badaniach opisano mechanizm, dzięki któremu kompleks antygen–przeciwciało utrzymuje się długotrwale, jest stale internalizowany i powtórnie eksponowany przez grudkowe komórki dendrytyczne.63 Niedawno wykazano również, że za „archiwizację” antygenów długo po ekspozycji antygenowej odpowiedzialne są również komórki śródbłonka limfatycznego.64 Prawdopodobnie w podtrzymywaniu życia tych sporadycznie dzielących się i wydzielających przeciwciała limfocytów B pomaga nie tylko obecność antygenu, ale także reaktywność krzyżowa z innymi antygenami.
Końcowe różnicowanie odpowiedzi humoralnej limfocytów B w niniejszym opracowaniu zostanie opisane jedynie skrótowo. W ośrodkach rozmnażania węzłów chłonnych naiwne limfocyty B z antygenowo swoistym receptorem wiążą antygen, co jest pierwszym sygnałem koniecznym do aktywacji limfocytu B. Związane antygeny ulegają internalizacji i strawieniu w lizosomach. Przy udziale obecnych na limfocytach B cząsteczek MHC klasy II powstałe peptydy są prezentowane grudkowym pomocniczym limfocytom T, wykazującym ekspresję antygenowo swoistego receptora limfocytu T (T-cell receptor – TCR). W odpowiedzi limfocyty T dostarczają limfocytom B dodatkowych sygnałów, m.in. poprzez produkcję IL-21. Sygnały te umożliwiają podziały limfocytów B, somatyczne hipermutacje (umożliwiające tzw. dojrzewanie powinowactwa do antygenu) oraz przełączenie klas produkowanych przeciwciał. W dalszej kolejności zachodzi selekcja tych limfocytów B, które wykazują większe powinowactwo do antygenu. Taka selekcja trwa około miesiąca. Ostatecznie prowadzi to do powstania przeciwciał o dużym powinowactwie, które są skuteczniejsze przy neutralizacji i opsonizacji drobnoustrojów chorobotwórczych oraz ich produktów. Proces somatycznych hipermutacji nie występuje w limfocytach T, ponieważ nie ma żadnych korzyści z posiadania receptora TCR o dużym powinowactwie.
Limfocyty T i B zaangażowane w odpowiedź immunologiczną ulegają klonalnej ekspansji i przejściowo mogą stanowić znaczny odsetek wszystkich krążących limfocytów T,65 czasem nawet >10%. Jednak z czasem, w wyniku aktywacji, a następnie apoptozy indukowanej aktywacją, komórki efektorowe są zużywane, a ich liczba się zmniejsza. Jednak gdy drobnoustrój zostanie wyeliminowany, przez dłuższy czas utrzymują się limfocyty T i B pamięci – po infekcji ich liczba znacznie przekracza liczbę naiwnych limfocytów T.
W czasie dorastania powstaje szeroki repertuar swoistości antygenowych, obejmujący limfocyty T i B pamięci wytworzone w czasie naturalnych zakażeń oraz szczepień, ale także repertuar „naiwnych” limfocytów pamięci ukształtowany przez ekspozycję na mikrobiotę, antygeny pokarmowe i wziewne. Ze względu na ogromną różnorodność repertuaru receptorów limfocytów T i B, dużą przypadkowość w wyborze klonu komórkowego, który zareaguje na dany bodziec, oraz przypadkowy sposób powstawania somatycznych hipermutacji w limfocytach B, dokładny skład krążących limfocytów jest różny u poszczególnych osób, nawet u bliźniąt jednojajowych.66 Dodatkowo, ogromna zmienność genetyczna, wynikająca z wysoce polimorficznych genów HLA, predysponująca do różnej odpowiedzi u poszczególnych osób,67 oraz geny odporności wrodzonej odpowiadają za odmienną osobniczą reakcję immunologiczną nawet na identyczny drobnoutrój chorobotwórczy.

Starzenie się układu odpornościowego

Wraz z wiekiem układ odpornościowy ulega przebudowie, a jego funkcje ulegają osłabieniu, co ma kluczowe znaczenie dla zdrowia i życia.68,69 Starzenie się układu odpornościowego predysponuje osoby starsze do wystąpienie ostrych infekcji wirusowych i bakteryjnych. Ponadto, śmiertelność z powodu zakażeń u osób w podeszłym wieku jest 3-krotnie większa niż u młodych dorosłych.70 W krajach rozwiniętych choroby zakaźne wciąż są czwartą pod względem częstości przyczyną zgonów wśród osób starszych. Ponadto nieprawidłowa odpowiedź układu odpornościowego u osób starszych może prowadzić do zaostrzenia procesów zapalnych, prawdopodobnie przyczyniając się do wystąpienia innych chorób wieku podeszłego, takich jak choroby układu sercowo-naczyniowego, udary, nowotwory czy choroba Alzheimera.71 Osłabiona odpowiedź immunologiczna wiąże się z mniejszą skutecznością szczepionek.69,72 Starzenie się układu odpornościowego powoduje także reaktywacje utajonych zakażeń wirusowych, na przykład wirusem ospy wietrznej i półpaśca.
Pogorszenie funkcji układu odpornościowego z wiekiem może też prowadzić do naruszenia homeostazy pomiędzy mikrobiotą a organizmem gospodarza. Ograniczenie różnorodności bakterii jelitowych wiąże się z występowaniem biegunki wywołanej przez Clostridium difficile.73 Ponadto, zmiana profilu flory bakteryjnej jelit, powstałej w młodości, wiąże się z rozwojem chorób zapalnych jelit.74 Zwiększenie z wiekiem proporcji bakterii prozapalnych przy jednoczesnym zmniejszeniu liczebności gatunków o właściwościach immunomodulujących może sprzyjać powstawaniu chorób zapalnych, a następnie utrzymywaniu się ich objawów.73
Jednocześnie starzenie się układ odpornościowego prowadzi do słabszej tolerancji własnych antygenów, co może sprzyjać występowaniu chorób autoimmunizacyjnych.75 Jest to prawdopodobnie spowodowane limfopenią obserwowaną u osób starszych,76 osłabieniem funkcji limfocytów Treg oraz upośledzonym oczyszczeniem tkanek z komórek apoptotycznych przez makrofagi.68
Zwiększona zachorowalność na skutek starzenia się układu odpornościowego jest bezpośrednią konsekwencją rozregulowania nabytej odporności u osób starszych. Mała liczba naiwnych limfocytów T w stosunku do limfocytów T pamięci42,43 jest konsekwencją zmniejszenia produkcji nowych limfocytów przez grasicę, która uległa inwolucji. Krążące limfocyty T mogą proliferować mimo braku stymulacji antygenowej, zwiększając liczbę komórek tzw. pamięci wirtualnej (czyli komórek, które posiadają immunofenotyp komórek pamięci mimo braku kontaktu z antygenem),77-79 ale równocześnie zdolność do wytworzenia „prawdziwej” pamięci immunologicznej w odpowiedzi na antygeny rozpoznawane de novo jest zmniejszona. Konsekwencją tych zjawisk jest gorsza odpowiedź na szczepienia. Obserwuje się m.in. upośledzenie wytwarzania cytokin przez limfocyty T CD4 i CD8, zmniejszenie ekspresji kluczowych antygenów powierzchniowych oraz odwrócenie stosunku limfocytów CD4 do CD8.68 Ekspansja limfocytów T, utrzymujących pod kontrolą utajone infekcje wirusowe, takie jak CMV i EBV, zmniejsza liczbę komórek T CD8+ swoistych dla innych, potencjalnie śmiertelnych wirusów,80 co dodatkowo pogłębia zmniejszona produkcja naiwnych limfocytów T w grasicy.
Podczas gdy liczba krążących limfocytów B nie zmniejsza się wraz z wiekiem, skład tego przedziału komórkowego zmienia się. Podobnie jak w przypadku limfocytów T, naiwne limfocyty B są zastępowane przez komórki pamięci, które mogą wykazywać małe dojrzewanie powinowactwa i przełączanie klas.68
Generalnie zmiany zachodzące w limfocytach T i B upośledzają odpowiedź immunologiczną na nowe, zarówno ostre, jak i utajone infekcje wirusowe oraz szczepionki.
Wrodzona odpowiedź immunologiczna także zmniejsza się wraz z wiekiem. Zmiany dotyczą liczby komórek odporności wrodzonej, z przekierunkowaniem hematopoezy w stronę linii mieloidalnej.81,82 Starzejące się neutrofile wykazują upośledzone funkcje: zmniejszoną zdolność do fagocytozy oraz produkcji reaktywnych form tlenu, co jest częściowo związane ze zmniejszoną ekspresją receptorów dla fragmentów Fc immunoglobulin (FcγR).83 Podobnie starzejące się makrofagi również wykazują zaburzoną produkcję reaktywnych form tlenu. Makrofagi oraz komórki dendrytyczne wykazują zmniejszoną fagocytozę oraz mniejszą ekspresję MHC klasy II.68 Usuwanie komórek apoptotycznych oraz coraz to liczniejszych starzejących się komórek jest zatem nieefektywne, co przyczynia się do powstania fenotypu prozapalnego. W modelu mysim, gdy starzejące się komórki usuwano sztucznie ze starych myszy, zwierzęta żyły dłużej i były zdrowsze.84
Najbardziej krytyczną cechą starzenia się wrodzonego układu immunologicznego jest zwiększenie produkcji cytokin prozapalnych IL-1, IL-6, IL-18 i czynnika martwicy nowotworów (TNF).85 Powstający przewlekły słaby stan zapalny jest prawdopodobnie przyczyną miażdżycy, demencji oraz nowotworów, łącząc stan zapalny ze starzeniem innych tkanek.71,86

Płeć

Kobiety produkują więcej swoistych przeciwciał i częściej obserwuje się u nich niepożądane odczyny po podaniu szczepionek. Dotyczy to szczepienia BCG, przeciwko odrze, śwince i różyczce (MMR) oraz grypie. Różnice takie obserwowano w różnych grupach wiekowych – od okresu niemowlęcego do wieku podeszłego.
Uważa się, że wpływają na to zarówno czynniki biologiczne (genetyczne, hormonalne, immunologiczne), jak i behawioralne.87,88

Uwarunkowania genetyczne

Nie ulega wątpliwości, że odpowiedź na szczepienia jest osobniczo zmienna. Różnice w budowie DNA w populacji nazywamy polimorfizmem. Do polimorfizmu nie można jednak zakwalifikować rzadko występujących zmian DNA. Podstawą kwalifikacji do tej kategorii jest zbyt częste występowanie danej różnicy w budowie DNA, aby można było mówić o mutacji. Największy stopień polimorfizmu spośród wszystkich genów człowieka wykazują geny głównego układu zgodności tkankowej (MHC). Ludzkie MHC określane są mianem ludzkich antygenów leukocytarnych (human leukocyte antigens – HLA). W 1980 roku francuski badacz, Jean Dausset, oraz badacze amerykańscy, George Davis Snell i Baruj Banacerraf, otrzymali Nagrodę Nobla za badania nad MHC. Cząsteczki MHC klasy I występują na wszystkich komórkach jądrzastych, MHC klasy II na limfocytach B, makrofagach i komórkach dendrytycznych. W obrębie układu HLA geny HLA-A, HLA-B i HLA-DRB1 występują w postaci kilkuset alleli. Wybitny polimorfizm genów w obrębie MHC jest wynikiem selekcji naturalnej dokonującej się pod wpływem drobnoustrojów chorobotwórczych. Najważniejszą funkcją układu MHC jest wiązanie i prezentacja antygenów limfocytom T. Od polimorfizmu HLA klasy I i II zależy dostępny repertuar antygenów szczepionkowych prezentowanych limfocytom T, dlatego polimorfizm ten warunkuje późniejszą odpowiedź immunologiczną.89 Przykładowo polimorfizm w zakresie HLA-DPB1 jest związany z odpowiedzią humoralną na szczepienie przeciwko różyczce. Ze swoistymi allelami HLA mogą być także związane występujące po szczepieniach reakcje niepożądane. Na przykład zaobserwowano związek między antygenami HLA-DR i przejściowym zapaleniem stawów po szczepieniu przeciwko różyczce.90 Obok wpływu na prezentację antygenu, polimorfizmy HLA oddziałują również na inne funkcje układu odpornościowego, na przykład odkryto związek pomiędzy produkcją IL-2 a allelami HLA klasy II oraz między produkcją TNF a allelami HLA klasy I.91 Najważniejszą funkcją IL-2 w odpowiedzi immunologicznej jest pobudzenie proliferacji efektorowych limfocytów T cytotoksycznych CD8, natomiast TNF ma wpływ na niemal każdy element odpowiedzi immunologicznej i jest głównym czynnikiem prozapalnym.92
Na odpowiedź immunologiczną wpływają także polimorfizmy pojedynczych nukleotydów (single nucleotid polimorphism – SNP) genów zaangażowanych w odpowiedź nieswoistą i swoistą. SNP to zjawisko zmienności sekwencji DNA w zakresie pojedynczego nukleotydu (A, T, C lub G) pomiędzy osobnikami danego gatunku. O SNP mówimy, kiedy pojedynczy nukleotyd danego genu różni się od nukleotydu (określanego jako dziki wariant [wild type]), który występuje u większości populacji. Względną częstość występowania danego wariantu związanego z SNP można ustalić w badaniach populacyjnych. Występowanie SNP jest różne w populacjach odmiennych pod względem geograficznym lub etnicznym. Zmiany w sekwencji ludzkiego DNA mogą wywoływać choroby (kiedy sekwencja powstałego białka ma zmieniony aminokwas) albo zmieniać odpowiedź organizmu na wybrane drobnoustroje chorobotwórcze, substancje chemiczne i leki. SNP w sekwencji kodującej jakiegoś genu nie musi prowadzić do zmiany w sekwencji aminokwasowej białka. Przypadki SNP, które stwierdza się poza sekwencjami kodującymi genów, mogą również wywierać działania biologiczne (np. zmiana w sekwencji RNA lub w sekwencji regulującej ekspresję genu). Przykładowo SNP w zakresie HLA-DP jest skorelowany ze słabą odpowiedzią lub jej brakiem na szczepienie przeciwko wirusowemu zapaleniu wątroby (WZW) typu B,93 a SNP genu syntetazy 2’-5-oligoadenylowanej (OAS) wiąże się z gorszą odpowiedzią na szczepienie przeciwko różyczce.90 OAS jest białkiem indukowanym przez interferon, zaangażowanym w odpowiedź wrodzoną.
Odpowiedź poszczepienna zależy także od takich polimorfizmów, jak polimorfizmy w genach TNF/TNFRSF1B, IL2B, IL-6, RIG-1, TRIM5, TRIM22 (korelują ze stężeniem przeciwciał IgG po szczepieniu przeciwko różyczce),94 polimorfizmy w genach kodujących molekuły szlaków sygnałowych witaminy A oraz witaminy D, które korelują z produkcją cytokin (IFN-γ, IL-2, TNF, GM-CSF).95 Wykazano również wpływ polimorfizmów w genach dla IL-4,96 IL-10, TNF,97 DTX198 oraz IRG199 na odpowiedź immunologiczną na szczepionkę przeciwko WZW typu B. Odpowiedź immunologiczna na szczepienie przeciwko różyczce i odrze zależy od polimorfizmu genów dla IL-10RB i IL-12B oraz od SNP w genie dla IFNαR2.100
Polimorfizmy są również przyczyną zmiennej osobniczo odpowiedzi na szczepionki bakteryjne (np. BCG).101 SNP w genie dla IL-10 odgrywa istotną rolę w nasileniu odpowiedzi komórkowej na bezkomórkową szczepionkę przeciwko krztuścowi.102 Bardzo silny wpływ na jakość odpowiedzi poszczepiennej ma polimorfizm genu dla TLR4.101

Antygeny

Różnice w odpowiedzi immunologicznej na różne rodzaje szczepionek omówiono w I części artykułu.1 Należy zwrócić uwagę, że przebycie infekcji nie zawsze daje lepszą odpowiedź immunologiczną niż podanie szczepionki (argument o przewadze „naturalnej odporności” często przytaczają przeciwnicy szczepień ochronnych). W niektórych zakażeniach bakteryjnych nie dochodzi do naturalnej produkcji przeciwciał przeciwko toksynom bakteryjnym. Przebycie zakażenia laseczką tężca (Clostridium tetani) nie gwarantuje powstania limfocytów pamięci i uzyskania odporności. Natomiast po podaniu skojarzonej szczepionki przeciwko błonicy, tężcowi i krztuścowi (DTP), zawierającej unieczynnioną toksynę tężcową i błoniczą oraz fragmenty pałeczki krztuśca, uzyskujemy wysoki poziom odporności. Dzięki szczepieniom powstają również przeciwciała klasy IgA, a część z nich pojawia się na błonach śluzowych.103

Dawka antygenu

Ważne jest użycie odpowiedniej dawki antygenu, którą określa się eksperymentalnie. Zwiększanie dawki antygenu w szczepionkach inaktywowanych do pewnej granicznej wartości wywołuje silniejszą odpowiedź pierwotną. Wykazano jednak, że w szczepieniu przypominającym przeciwko błonicy taką samą odpowiedź immunologiczną można uzyskać, stosując mniejsze niż standardowe dawki szczepionki.104

Schematy szczepień

Schematy szczepień ochronnych silnie warunkują nasilenie i trwałość odpowiedzi immunologicznej. Wielokrotnie analizowano to na przykładzie szczepionki przeciwko WZW typu B i A. Krótki odstęp pomiędzy pierwszymi dawkami (1–2 tyg.) jest wskazany, kiedy zależy nam na szybkim uzyskaniu ochronnego stężenia przeciwciał. Taki schemat ma jednak swoje ograniczenia – nie osiąga się efektu widocznego w przypadku dłuższych odstępów między dawkami (1–2 mies.), gdzie powstają długo żyjące limfocyty B pamięci.105,106 Czas utrzymywania się odporności poszczepiennej jest proporcjonalny do liczby powstających w odpowiedzi na szczepienia długo żyjących komórek plazmatycznych. Opracowano matematyczne modele kinetyki odpowiedzi immunologicznej po szczepieniu przeciwko WZW typu B. Najlepszym wskaźnikiem „trwałości” odpowiedzi immunologicznej jest stężenie przeciwciał uzyskiwane 6–12 miesięcy po pełnym szczepieniu, ponieważ wówczas kończy się odpowiedź plazmocytów krótko żyjących.107 W przypadku osób nieodpowiadających na pełny cykl szczepienia przeciwko WZW typu B, podobną odpowiedź immunologiczną (serokonwersję) uzyskiwano po ponownym podaniu 1 lub 2 dawek szczepionki.108
Ciekawa obserwacja dotyczy szczepienia przeciwko grypie pojedynczą dawką oraz 2 dawkami (dawka przypominająca 16 tygodni po pierwszym szczepieniu) u dorosłych. W obu przypadkach osiągnięto podobne stężenie swoistych przeciwciał, natomiast silniejszą stymulację odpowiedzi limfocytów T zaobserwowano po podaniu pojedynczej dawki. Podobnie było z odpowiedzią cytokinową: tylko w grupie osób szczepionych pojedynczą dawką obserwowano zmniejszenie produkcji IL-10 (cytokina przeciwzapalna) i zwiększenie produkcji IFN-γ. Dodatkowo po pojedynczej dawce szczepienia stwierdzano większe stężenie granzymu B. Granzymy, podobnie jak perforyna, stanowią niezbędny element reakcji cytotoksycznej.109 Istnieją przypuszczenia, że coroczne podawanie 3-walentnej inaktywowanej szczepionki przeciw grypie może negatywnie wpływać na odpowiedź immunologiczną na nowe pandemiczne szczepy tego wirusa. Biorąc jednak pod uwagę rzadkie pojawianie się nowych pandemicznych szczepów i stosunkowo dużą trafność prognozowania szczepów wirusa grypy sezonowej, które będą dominować w danym sezonie epidemicznym, nadal zaleca się coroczne szczepienia. Być może dobrym rozwiązaniem byłoby stosowanie „żywych” szczepionek donosowych, które dają możliwość odpowiedzi na szczepy heterologiczne, angażując mechanizmy odporności nieswoistej.110

Równoczesne podawanie kilku szczepionek

Układ immunologiczny może rozpoznać i zareagować na miliony antygenów w tym samym czasie. Liczba antygenów podawanych w szczepionkach stanowi znikomy odsetek tej wartości.103 W wielu badaniach wykazano, że odpowiedź immunologiczna na szczepionki wieloskładnikowe jest taka sama jak na szczepionki nieskojarzone (pojedyncze). Równoczasowe podanie kilku szczepionek, na przykład BCG i przeciwko WZW typu B lub podanie szczepionki 6-składnikowej DTPa-HBV-IPV-Hib, nie pogarsza odpowiedzi immunologicznej.111-114 Zarówno produkcja swoistych przeciwciał, jak i powstawanie komórek pamięci jest podobne jak w przypadku oddzielnego podania tych szczepień.

Inne uwarunkowania

Odpowiedź immunologiczna na szczepienia zależy także od stanu klinicznego osoby szczepionej oraz chorób towarzyszących. Czynniki te mogą być przyczyną braku odpowiedzi (pierwotne niedobory odporności) oraz zwiększonego katabolizmu przeciwciał lub ich utraty (przez przewód pokarmowy lub nerki). Ich omówienie wykracza poza ramy tego opracowania.
Pewne kontrowersje budzi pytanie, czy przeciwciała anty-HBs przeniesione biernie przez łożysko mogą mieć wpływ na odpowiedź immunologiczną na szczepienie przeciwko WZW typu B u niemowląt. W badaniach wieloośrodkowych obejmujących 1063 par matka–niemowlę wykazano, że duże stężenie matczynych przeciwciał anty-HBs może hamować odpowiedź immunologiczną niemowląt na szczepienie podstawowe przeciwko WZW typu B. Nie stwierdzono natomiast istotnego wpływu stężenia matczynych przeciwciał na podanie dawki przypominającej.115 W tym samym kontekście badano odpowiedź na szczepienie przeciwko krztuścowi u niemowląt matek zaszczepionych w ciąży. Okazało się, że obserwowano niewielkie „stłumienie” odpowiedzi immunologicznej, jednak znaczenie kliniczne tego zjawiska nie jest znane.116 W badaniu obejmującym 29 par matka–niemowlę wykazano także, że latentna infekcja Mycobacterium tuberculosis u kobiety ciężarnej osłabia odpowiedź immunologiczną na szczepienie BCG u niemowlęcia, natomiast odpowiedź prozapalna (produkcja cytokin) po szczepieniu dziecka zależy od rozmiaru blizny u matki.117
Większość ludzi przechodzi szczepienia w okresie niemowlęcym i wraz z upływem czasu obserwuje się zmniejszenie miana swoistych przeciwciał wytworzonych po szczepieniu.118 Nie znaczy to jednak, że „zanika” również pamięć immunologiczna. W przypadku szczepienia przeciwko błonicy komórki pamięci immunologicznej nie wystarczają do ochrony przed zakażeniem, gdyż bakteria ta charakteryzuje się krótkim okresem inkubacji (1–5 dni). Podobnie długo żyjące komórki pamięci mogą nie być zdolne zapobiec ostremu zapaleniu wątroby typu B po zaniknięciu swoistych przeciwciał poszczepiennych. Kiedy stężenie anty-HBs zmniejsza się do wartości <10 IU/l, może wystąpić ostra infekcja, co odzwierciedla pojawienie się przeciwciał anty-HBc.119-121 U osób po pełnym cyklu szczepień, u których stężenie przeciwciał anty-HBs z czasem zmniejszyło się do wartości <10 IU/l, nie obserwuje się jednak antygenemii HBs, przewlekłego nosicielstwa antygenu HBs czy objawowej choroby. Oznacza to, że komórki efektorowe powstają przed zakończeniem okresu inkubacji wirusa. Tak więc limfocyty B pamięci rozpoznające swoiście antygen HBs są obecne w organizmie nawet wiele lat po szczepieniu.122-124 O trwałości odpowiedzi immunologicznej na szczepienie BCG może świadczyć fakt, że nie wykazano różnic w produkcji IFN-γ 10 lat po szczepieniu i 10–30 lat po podaniu szczepionki.125

* TLR – receptory Toll-podobne, należące do receptorów rozpoznających wzorce (PRR), czyli struktury charakterystyczne dla drobnoustrojów, np. lipopolisacharyd bakterii Gram-ujemnych

Piśmiennictwo:

1. Szaflarska A., Bukowska-Strakova K.: Immunologia dla wakcynologów – cz I. Med. Prakt. Szczepienia, 4/2016: 55–62
2. Simon A.K., Hollander G.A., McMichael A.: Evolution of the immune system in humans from infancy to old age. Proc. Biol. Sci., 2015; 282 (1821): 20 143 085
3. Bonora M., Wieckowsk M.R., Chinopoulos C. i wsp.: Molecular mechanisms of cell death: central implication of ATP synthase in mitochondrial permeability transition. Oncogene, 2015; 34 (12): 1608
4. Nussbaum C., Gloning A., Pruenster M. i wsp.: Neutrophil and endothelial adhesive function during human fetal ontogeny. J. Leukoc. Biol., 2013; 93 (2): 175–184
5. Filias A., Theodorou G.L., Mouzopoulou S. i wsp.: Phagocytic ability of neutrophils and monocytes in neonates. BMC Pediatr., 2011; 11: 29
6. Förster-Waldl E., Sadeghi K., Tamandl D. i wsp.: Monocyte toll-like receptor 4 expression and LPS-induced cytokine production increase during gestational aging. Pediatr. Res., 2005; 58 (1): 121–124
7. Yan S.R., Qing G., Byers D.M. i wsp.: Role of MyD88 in diminished tumor necrosis factor alpha production by newborn mononuclear cells in response to lipopolysaccharide. Infect. Immun., 2004; 72 (3): 1223–1229
8. Sadeghi K., Berger A., Langgartner M. i wsp.: Immaturity of infection control in preterm and term newborns is associated with impaired toll-like receptor signaling. J. Infect. Dis., 2007; 195 (2): 296–302
9. Al-Hertani W., Yan S.R., Byers D.M., Bortolussi R.: Human newborn polymorphonuclear neutrophils exhibit decreased levels of MyD88 and attenuated p38 phosphorylation in response to lipopolysaccharide. Clin. Invest. Med., 2007; 30 (2): E44–E53
10. Blahnik M.J., Ramanathan R., Riley C.R., Minoo P.: Lipopolysaccharide-induced tumor necrosis factor-alpha and IL-10 production by lung macrophages from preterm and term neonates. Pediatr. Res., 2001; 50 (6): 726–731
11. Willems F., Vollstedt S., Suter M.: Phenotype and function of neonatal DC. Eur. J. Immunol., 2009; 39 (1): 26–35
12. De Wit D., Tonon S., Olislagers V. i wsp.: Impaired responses to toll-like receptor 4 and toll-like receptor 3 ligands in human cord blood. J. Autoimmun., 2003; 21 (3): 277–281
13. De Kleer I., Willems F., Lambrecht B., Goriely S.: Ontogeny of myeloid cells. Front. Immunol., 2014; 5: 423
14. Schüller S.S., Sadeghi K., Wisgrill L. i wsp.: Preterm neonates display altered plasmacytoid dendritic cell function and morphology. J. Leukoc. Biol., 2013; 93 (5): 781–788
15. Lee Y.C., Lin S.J.: Neonatal natural killer cell function: relevance to antiviral immune defense. Clin. Dev. Immunol., 2013; 2013: 427 696
16. Ivarsson M.A., Loh L., Marquardt N. i wsp.: Differentiation and functional regulation of human fetal NK cells. J. Clin. Invest., 2013; 123 (9): 3889–3901
17. McGreal E.P., Hearne K., Spiller O.B.: Off to a slow start: under-development of the complement system in term newborns is more substantial following premature birth. Immunobiology, 2012; 217 (2): 176–186
18. Haddad R., Guimiot F., Six E. i wsp.: Dynamics of thymus-colonizing cells during human development. Immunity, 2006; 24 (2): 217–230
19. Zlotoff D.A., Schwarz B.A., Bhandoola A.: The long road to the thymus: the generation, mobilization, and circulation of T-cell progenitors in mouse and man. Semin. Immunopathol., 2008; 30 (4): 371–382
20. Mold J.E., Venkatasubrahmanyam S., Burt T.D. i wsp.: Fetal and adult hematopoietic stem cells give rise to distinct T cell lineages in humans. Science, 2010; 330 (6011): 1695–1699
21. Takahata Y., Nomura A., Takada H. i wsp.: CD25+CD4+ T cells in human cord blood: an immunoregulatory subset with naive phenotype and specific expression of forkhead box p3 (Foxp3) gene. Exp. Hematol., 2004; 32 (7): 622–629
22. Burlingham W.J., Grailer A.P., Heisey D.M. i wsp.: The effect of tolerance to noninherited maternal HLA antigens on the survival of renal transplants from sibling donors. N. Engl. J. Med., 1998; 339 (23): 1657–1664
23. Mackroth M.S., Malhotra I., Mungai P. i wsp.: Human cord blood CD4+CD25hi regulatory T cells suppress prenatally acquired T cell responses to Plasmodium falciparum antigens. J. Immunol., 2011; 186 (5): 2780–2791
24. Holt P.G.: The role of genetic and environmental factors in the development of T-cell mediated allergic disease in early life. Paediatr. Respir. Rev., 2004; 5 Suppl A: S27–S30
25. Goriely S., Van Lint C., Dadkhah R. i wsp.: A defect in nucleosome remodeling prevents IL-12(p35) gene transcription in neonatal dendritic cells. J. Exp. Med., 2004; 199 (7): 1011–1016
26. Hebel K., Weinert S., Kuropka B. i wsp.: CD4+ T cells from human neonates and infants are poised spontaneously to run a nonclassical IL-4 program. J. Immunol., 2014; 192 (11): 5160–5170
27. Leeansyah E., Loh L., Nixon D.F., Sandberg J.K.: Acquisition of innate-like microbial reactivity in mucosal tissues during human fetal MAIT-cell development. Nat. Commun., 2014; 5: 3143
28. Silva-Santos B., Schamel W.W., Fisch P., Eberl M.: ?? T-cell conference 2012: close encounters for the fifth time. Eur. J. Immunol., 2012; 42 (12): 3101–3105
29. Gibbons D., Fleming P., Virasami A. i wsp.: Interleukin-8 (CXCL8) production is a signatory T cell effector function of human newborn infants. Nat. Med., 2014; 20 (10): 1206–1210
30. Gibbons D.L., Haque S.F., Silberzahn T. i wsp.: Neonates harbour highly active gammadelta T cells with selective impairments in preterm infants. Eur. J. Immunol., 2009; 39 (7): 1794–1806
31. Sanz E., Munoz-A N., Monserrat J. i wsp.: Ordering human CD34+CD10-CD19+ pre/pro-B-cell and CD19- common lymphoid progenitor stages in two pro-B-cell development pathways. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2010; 107 (13): 5925–5930
32. Griffin D.O., Rothstein T.L.: A small CD11b(+) human B1 cell subpopulation stimulates T cells and is expanded in lupus. J. Exp. Med., 2011; 208 (13): 2591–2598
33. Hannet I., Erkeller-Yuksel F., Lydyard P., Deneys V., DeBruyere M.: Developmental and maturational changes in human blood lymphocyte subpopulations. Immunol. Today, 1992; 13 (6): 215, 218
34. Kaur K., Chowdhury S., Greenspan N.S., Schreiber J.R.: Decreased expression of tumor necrosis factor family receptors involved in humoral immune responses in preterm neonates. Blood, 2007; 110 (8): 2948–2954
35. Griffioen A.W., Rijkers G.T., Janssens-Korpela P., Zegers B.J.: Pneumococcal polysaccharides complexed with C3d bind to human B lymphocytes via complement receptor type 2. Infect. Immun., 1991; 59 (5): 1839–1845
36. Haase C., Yu L., Eisenbarth G., Markholst H.: Antigen-dependent immunotherapy of non-obese diabetic mice with immature dendritic cells. Clin. Exp. Immunol., 2010; 160 (3): 331–339
37. Gatto D., Pfister T., Jegerlehner A. i wsp.: Complement receptors regulate differentiation of bone marrow plasma cell precursors expressing transcription factors Blimp-1 and XBP-1. J. Exp. Med., 2005; 201 (6): 993–1005
38. Ridings J., Dinan L., Williams R., Roberton D., Zola H.: Somatic mutation of immunoglobulin V(H)6 genes in human infants. Clin. Exp. Immunol., 1998; 114 (1): 33–39
39. Pihlgren M., Friedli M., Tougne C. i wsp.: Reduced ability of neonatal and early-life bone marrow stromal cells to support plasmablast survival. J. Immunol., 2006; 176 (1): 165–172
40. Hicks J., Allen G.: A century of change: trends in UK statistics since 1900. Research paper 99/111. London, UK: House of Commons Library, 1999 www.researchbriefings.parliament.uk
41. Cutler D.M., Meara E.: Changes in the age distribution of mortality over the 20th century National Bureau of Economic Research, 2001. www.nber.org/papers/w8556
42. Walker J.M., Slifka M.K.: Longevity of T-cell memory following acute viral infection. Adv. Exp. Med. Biol., 2010; 684: 96–107
43. Zinkernagel R.M.: On immunological memory. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci., 2000; 355 (1395): 369–371
44. Virgin H.W., Wherry E.J., Ahmed R.: Redefining chronic viral infection. Cell, 2009; 138 (1): 30–50
45. Matamoros S., Gras-Leguen C., Le Vacon F., Potel G., de La Cochetiere M.F.: Development of intestinal microbiota in infants and its impact on health. Trends Microbiol., 2013; 21 (4): 167–173
46. Round J.L., Mazmanian S.K.: The gut microbiota shapes intestinal immune responses during health and disease. Nat. Rev. Immunol., 2009; 9 (5): 313–323
47. Ganusov V.V., De Boer R.J.: Do most lymphocytes in humans really reside in the gut? Trends Immunol., 2007; 28 (12): 514–518
48. Yang Y., Torchinsky M.B., Gobert M. i wsp.: Focused specificity of intestinal TH17 cells towards commensal bacterial antigens. Nature, 2014; 510 (7503): 152–156
49. Ivanov I.I., Atarashi K., Manel N. i wsp.: Induction of intestinal Th17 cells by segmented filamentous bacteria. Cell, 2009; 139 (3): 485–498
50. Campion S.L., Brodie T.M., Fischer W. i wsp.: Proteome-wide analysis of HIV-specific naive and memory CD4(+) T cells in unexposed blood donors. J. Exp. Med., 2014; 211 (7): 1273–1280
51. Round J.L., O’Connell R.M., Mazmanian S.K.: Coordination of tolerogenic immune responses by the commensal microbiota. J. Autoimmun., 2010; 34 (3): J220–J225
52. Su L.F., Kidd B.A., Han A., Kotzin J.J., Davis M.M.: Virus-specific CD4(+) memory-phenotype T cells are abundant in unexposed adults. Immunity, 2013; 38 (2): 373–383
53. Shearer W.T., Rosenblatt H.M., Gelman R.S., i wsp.; Pediatric AIDS Clinical Trials Group: Lymphocyte subsets in healthy children from birth through 18 years of age: the Pediatric AIDS Clinical Trials Group P1009 study. J. Allergy Clin. Immunol., 2003; 112 (5): 973–980
54. Selin L.K., Nahill S.R., Welsh R.M.: Cross-reactivities in memory cytotoxic T lymphocyte recognition of heterologous viruses. J. Exp. Med., 1994; 179 (6): 1933–1943
55. Su Z.J., Chen H.B., Zhang J.K., Xu L.: Effects of dendritic cells from cord blood CD34+ cells on human hepatocarcinoma cell line BEL-7402 in vitro and in SCID mice. World J. Gastroenterol., 2005; 11 (16): 2502–2507
56. Atarashi K., Tanoue T., Shima T. i wsp.: Induction of colonic regulatory T cells by indigenous Clostridium species. Science, 2011; 331 (6015): 337–341
57. Nagano Y., Itoh K., Honda K.: The induction of Treg cells by gut-indigenous Clostridium. Curr. Opin. Immunol., 2012; 24 (4): 392–397
58. Macpherson A.J., Harris N.L.: Interactions between commensal intestinal bacteria and the immune system. Nat. Rev. Immunol., 2004; 4 (6): 478–485
59. Macpherson A.J., Hunziker L., McCoy K., Lamarre A.: IgA responses in the intestinal mucosa against pathogenic and non-pathogenic microorganisms. Microbes Infect., 2001; 3 (12): 1021–1035
60. Trama A.M., Moody M.A., Alam S.M. i wsp.: HIV-1 envelope gp41 antibodies can originate from terminal ileum B cells that share cross-reactivity with commensal bacteria. Cell Host Microbe, 2014; 16 (2): 215–226
61. Hinton P.R., Xiong J.M., Johlfs M.G. i wsp.: An engineered human IgG1 antibody with longer serum half-life. J. Immunol., 2006; 176 (1): 346–356
62. Tew J.G., Phipps R.P., Mandel T.E.: The maintenance and regulation of the humoral immune response: persisting antigen and the role of follicular antigen-binding dendritic cells as accessory cells. Immunol. Rev., 1980; 53: 175–201
63. Heesters B.A., Chatterjee P., Kim Y.A. i wsp.: Endocytosis and recycling of immune complexes by follicular dendritic cells enhances B cell antigen binding and activation. Immunity, 2013; 38 (6): 1164–1175
64. Tamburini B.A., Burchill M.A., Kedl R.M.: Antigen capture and archiving by lymphatic endothelial cells following vaccination or viral infection. Nat. Commun., 2014; 5: 3989
65. Callan M.F., Tan L., Annels N. i wsp.: Direct visualization of antigen-specific CD8+ T cells during the primary immune response to Epstein-Barr virus in vivo. J. Exp. Med., 1998; 187 (9): 1395–1402
66. Hawes G.E., Struyk L., van den Elsen P.J.: Differential usage of T cell receptor V gene segments in CD4+ and CD8+ subsets of T lymphocytes in monozygotic twins. J. Immunol., 1993; 150 (5): 2033–2045
67. Bjorkman P.J., Saper M.A., Samraoui B. i wsp.: The foreign antigen binding site and T cell recognition regions of class I histocompatibility antigens. Nature, 1987; 329 (6139): 512–518
68. Weiskopf D., Weinberger B., Grubeck-Loebenstein B.: The aging of the immune system. Transpl. Int., 2009; 22 (11): 1041–1050
69. Jiang N., He J., Weinstein J.A. i wsp.: Lineage structure of the human antibody repertoire in response to influenza vaccination. Sci. Transl. Med., 2013; 5 (171): 171ra19
70. Yoshikawa T.T.: Epidemiology and unique aspects of aging and infectious diseases. Clin. Infect. Dis., 2000; 30 (6): 931–933
71. Chung H.Y., Cesari M., Anton S. i wsp.: Molecular inflammation: underpinnings of aging and age-related diseases. Ageing Res. Rev., 2009; 8 (1): 18–30
72. Treanor J.J., Talbot H.K., Ohmit S.E. i wsp.; US Flu-VE Network: Effectiveness of seasonal influenza vaccines in the United States during a season with circulation of all three vaccine strains. Clin. Infect. Dis., 2012; 55 (7): 951–959
73. Biagi E., Candela M., Turroni S. i wsp.: Ageing and gut microbes: perspectives for health maintenance and longevity. Pharmacol. Res., 2013; 69 (1): 11–20
74. Maslowski K.M., Mackay C.R.: Diet, gut microbiota and immune responses. Nat. Immunol., 2011; 12 (1): 5–9
75. Goronzy J.J., Weyand C.M.: Aging, autoimmunity and arthritis: T-cell senescence and contraction of T-cell repertoire diversity–catalysts of autoimmunity and chronic inflammation. Arthritis Res. Ther., 2003; 5 (5): 225–234
76. Sheu T.T., Chiang B.L., Yen J.H., Lin W.C.: Premature CD4+ T cell aging and its contribution to lymphopenia-induced proliferation of memory cells in autoimmune-prone non-obese diabetic mice. PLoS One, 2014; 9 (2): e89 379
77. Akue A.D., Lee J.Y., Jameson S.C.: Derivation and maintenance of virtual memory CD8 T cells. J. Immunol., 2012; 188 (6): 2516–2523
78. White J.T., Cross E.W., Burchill M.A. i wsp.: Virtual memory T cells develop and mediate bystander protective immunity in an IL-15-dependent manner. Nat. Commun., 2016; 7: 11 291
79. Renkema K.R., Li G., Wu A. i wsp.:. Two separate defects, affecting true naive (TNa) or virtual memory (VM) T cell precursors, combine to reduce naive T cell responses with aging. J. Immunol., 2014; 192 (1): 151–159
80. De Martinis M., Franceschi C., Monti D., Ginaldi L.: Inflamm-ageing and lifelong antigenic load as major determinants of ageing rate and longevity. FEBS Lett., 2005; 579 (10): 2035–2039
81. Tang Q., Koh L.K., Jiang D., Schwarz H.: CD137 ligand reverse signaling skews hematopoiesis towards myelopoiesis during aging. Aging (Albany NY), 2013; 5 (9): 643–652
82. Wang J., Geiger H., Rudolph K.L.: Immunoaging induced by hematopoietic stem cell aging. Curr. Opin. Immunol., 2011; 23 (4): 532–536
83. Fülöp T. Jr, Fóris G., Wórum I., Leövey A.: Age-dependent alterations of Fc gamma receptor-mediated effector functions of human polymorphonuclear leucocytes. Clin. Exp. Immunol., 1985; 61 (2): 425–432
84. Baker D.J., Wijshake T., Tchkonia T. i wsp.: Clearance of p16Ink4a-positive senescent cells delays ageing-associated disorders. Nature, 2011; 479 (7372): 232–236
85. Franceschi C., Capri M., Monti D. i wsp.: Inflammaging and anti-inflammaging: a systemic perspective on aging and longevity emerged from studies in humans. Mech. Ageing Dev., 2007; 128 (1): 92–105
86. Gangemi S., Basile G., Merendino R.A. i wsp.: Increased circulating Interleukin-18 levels in centenarians with no signs of vascular disease: another paradox of longevity? Exp. Gerontol., 2003; 38 (6): 669–672
87. McElhaney J.E., Hooton J.W., Hooton N., Bleackley R.C.: Comparison of single versus booster dose of influenza vaccination on humoral and cellular immune responses in older adults. Vaccine, 2005; 23 (25): 3294–3300
88. Klein S.L., Marriott I., Fish E.N.: Sex-based differences in immune function and responses to vaccination. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., 2015; 109: 9–15
89. Jakóbisiak M., Płoski R.: Główny układ zgodności tkankowej. [W:] Golab J., Jakobisiak M., Lasek W.: Immunologia. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2002
90. Lambert N., Strebel P., Orenstein W., Icenogle J., Poland G.A.: Rubella. Lancet, 2015; 6 (385): 2297–2307
91. Ovsyannikova I.G., Ryan J.E., Vierkant R.A. i wsp.: Influence of host genetic variation on rubella-specific T cell cytokine responses following rubella vaccination. Vaccine, 2009; 27: 3359–3366
92. Gołąb J., Jakóbisiak M., Zagożdżon R., Obłąkowski P.: Cytokiny. [W:] Golab J., Jakobisiak M., Lasek W.: Immunologia. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2002
93. Wu T.W., Chen C.F., Lai S.K. i wsp.: SNP rs7 770 370 in HLA-DPB1 loci as a major genetic determinant of response to booster hepatitis B vaccination: results of a genome-wide association study. J. Gastroenterol. Hepatol., 2015; 30 (5): 891–899
94. Dhiman N., Haralambieva I.H., Kennedy R.B. i wsp.: SNP/haplotype associations in cytokine and cytokine receptor genes and immunity to rubella vaccine. Immunogenetics, 2010; 62: 197–210
95. Ovsyannikova I.G., Haralambieva I.H., Dhiman N. i wsp.: Polymorphisms in the vitamin A receptor and innate immunity genes influence the antibody response to rubella vaccination. J. Infect. Dis., 2010; 201 (2): 207–213
96. Roh E.Y., Song E.Y., Yoon J.H. i wsp.: Effects of interleukin-4 and interleukin-12B gene polymorphisms on hepatitis B virus vaccination. Ann. Hepatol., 2017; 16 (1): 63–70
97. Yukimasa N., Sato S., Oboshi W., Watanabe T., Uzawa R.: Influence of single nucleotide polymorphisms of cytokine genes on anti-HBs antibody production after hepatitis B vaccination in a Japanese young adult population. J. Med. Invest., 2016; 63 (3–4): 256–261
98. Xie B., Zhang P., Liu M. i wsp.: Deltex1 Polymorphisms Are Associated with Hepatitis B Vaccination Non-Response in Southwest China. PLoS One, 2016; 11 (2): e0 149 199
99. Liu X., Zhang L., Wu X.P. i wsp.: Polymorphisms in IRG1 gene associated with immune responses to hepatitis B vaccination in a Chinese Han population and function to restrain the HBV life cycle. J. Med. Virol., 2016 (w druku)
100. Ovsyannikova I.G., Salk H.M., Larrabee B.R., Pankratz V.S., Poland G.A.: Single-nucleotide polymorphism associations in common with immune responses to measles and rubella vaccines. Immunogenetics, 2014; 66 (11): 663–669
101. Smith C.M., Proulx M.K., Olive A.J. i wsp.: Tuberculosis Susceptibility and Vaccine Protection Are Independently Controlled by Host Genotype. MBio, 2016; 7 (5): e01 516–16
102. Gröndahl-Yli-Hannuksela K., Vahlberg T., Ilonen J., Mertsola J., He Q.: Polymorphism of IL-10 gene promoter region: association with T cell proliferative responses after acellular pertussis vaccination in adults. Immunogenetics, 2016; 68 (9): 733–741
103. Układu immunologicznego nie da się przeciążyć. Z prof. Januszem Marcinkiewiczem, Prezesem Polskiego Towarzystwa Immunologii Doświadczalnej i Klinicznej, rozmawia Maciej Müller. Med. Prakt. Szczep. 2/2014: 9–12
104. John T., Voysey M., Yu L.M. i wsp.: Immunogenicity of a low-dose diphtheria, tetanus and acellular pertussis combination vaccine with either inactivated or oral polio vaccine compared to standard-dose diphtheria, tetanus, acellular pertussis when used as a pre-school booster in UK children: A 5-year follow-up of a randomised controlled study. Vaccine, 2015; 33 (36): 4579–4585
105. Ghadiri K., Vaziri S., Afsharian M. i wsp.: Comparison of the accelerated and standard vaccination schedules against hepatitis B in healthcare workers. J. Res. Med. Sci., 2012; 17 (10): 934–937
106. Nothdurft H.D., Dietrich M., Zuckerman J.N. i wsp.: A new accelerated vaccination schedule for rapid protection against hepatitis A and B. Vaccine, 2002; 20 (7–8): 1157–1162
107. Honorati M.C., Palareti A., Dolzani P. i wsp.: A mathematical model predicting anti-hepatitis B virus surface antigen (HBs) decay after vaccination against hepatitis B. Clin. Exp. Immunol., 1999; 116: 121–126
108. Joukar F., Mansour-Ghanaei F., Naghipour M.R., Asgharnezhad M.: Immune Responses to Single-Dose Versus Double-Dose Hepatitis B Vaccines in Healthcare Workers not Responding to the Primary Vaccine Series: A Randomized Clinical Trial. Hepat. Mon., 2016; 16 (2): e32 799
109. McElhaney J.E., Hooton J.W., Hooton N., Bleackley R.C.: Comparison of single versus booster dose of influenza vaccination on humoral and cellular immune responses in older adults. Vaccine, 2005; 23 (25): 3294–3300
110. Amer A., Fischer H., Li X., Asmar B.: Possible impact of yearly childhood vaccination with trivalent inactivated influenza vaccine (TIV) on the immune response to the pandemic strain H1N1. Clin. Pediatr. (Phila), 2016; 55 (3): 245–250
111. Artan R., Erol M., Velipasaoglu S., Yegin O.: The effect of concurrent use of hepatitis B and Bacille Calmette-Guérin vaccination on anti-hepatitis B response. Saudi Med. J., 2004; 25 (12): 1939–1942
112. Avdicova M., Crasta P.D., Hardt K., Kovac M.: Lasting immune memory against hepatitis B following challenge 10–11 years after primary vaccination with either three doses of hexavalent DTPa-HBV-IPV/Hib or monovalent hepatitis B vaccine at 3, 5 and 11–12 months of age. Vaccine, 2015; 33 (23): 2727–2733
113. Cheng H.K., Rajadurai V.S., Amin Z. i wsp.: Immunogenicity and reactogenicity of two regimens of diphtheria-tetanus-acellular pertussis-hepatitis B-inactivated polio and Haemophilus influenzae type b vaccines administered to infants primed at birth with hepatitis B vaccine. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health, 2004; 35 (3): 685–692
114. Tregnaghi M., López P., Rocha C. i wsp.: A new DTPw-HB/Hib combination vaccine for primary and booster vaccination of infants in Latin America. Rev. Panam. Salud. Publica, 2006; 19 (3): 179–188
115. Chen X., Gui X., Zhang L. i wsp.: Maternal anti-HBVs suppress the immune response of infants to hepatitis B vaccine. J. Viral. Hepat., 2016; 23 (12): 955–960
116. Maertens K., Caboré R.N., Huygen K. i wsp.: Pertussis vaccination during pregnancy in Belgium: Follow-up of infants until 1 month after the fourth infant pertussis vaccination at 15 months of age. Vaccine, 2016; 34 (31): 3613–3619
117. Mawa P.A., Webb E.L., Filali-Mouhim A. i wsp.: Maternal BCG scar is associated with increased infant proinflammatory immune responses. Vaccine, 2017; 35: 273–282
118. Golaz A., Hardy I.R., Glushkevich T.G. i wsp.: Evaluation of a single dose of diphtheria-tetanus toxoids among adults in Odessa, Ukraine, 1995: immunogenicity and adverse reactions. J. Infect. Dis., 2000; 181 (Suppl 1): S203–S207
119. Young B.W., Lee S.S., Lim W.L. i wsp.: The long-term efficacy of plasma-derived hepatitis B vaccine in babies born to carrier mothers. J. Viral Hepat., 2003; 10: 23–30
120. Lin Y.C., Chang M.H., Ni Y.H. i wsp.: Long-term immunogenicity and efficacy of universal hepatitis B virus vaccination in Taiwan. J. Infect. Dis., 2003; 187: 134–138
121. Zanetti A.R., Mariano A., Romano L. i wsp.: Longterm immunogenicity of hepatitis B vaccination and policy for booster: an Italian multicenter study. Lancet, 2005; 366: 1379–1384
122. Romano L., Carsetti R., Tozzi A.E. i wsp.: Chronic hepatitis B infection in adolescents vaccinated at birth: an alarm bell in favor of the need for a booster? Hepatology, 2014; 59: 349
123. Duval B., Gilca V., Boulianne N. i wsp.: Comparative long term immunogenicity of two recombinant hepatitis B vaccines and the effect of a booster dose given after five years in a low endemicity country. Pediatr. Infect. Dis. J., 2005; 24: 213–218
124. CDC. Pink book. Epidemiology of vaccine preventable diseases. Hepatitis B. www.cdc.gov/vaccines/pubs/pinkbook/hepb.html
125. Rhodes S.J., Knight G.M., Fielding K. i wsp.: Individual-level factors associated with variation in mycobacterialspecific immune response: Gender and previous BCG vaccination status. Tuberculosis, 2016; 96: 37–43
Wybrane treści dla pacjenta
  • Szczepienie przeciwko gruźlicy
  • Szczepienia obowiązkowe dla podróżnych
  • Szczepienie przeciwko pałeczce hemofilnej typu b (Hib)
  • Szczepienia przed wyjazdem do Afryki Południowej
  • Barszcz Sosnowskiego - jak wygląda, objawy oparzenia, postępowanie po oparzeniu
  • Od czego zależy odporność?
  • Proces zapalny w oskrzelach
  • Szczepienie przeciwko środkowoeuropejskiemu odkleszczowemu zapaleniu mózgu
  • Szczepienie przeciwko odrze, śwince i różyczce
  • Szczepienia przed wyjazdem do Afryki Północnej

Reklama

Napisz do nas

Zadaj pytanie ekspertowi, przyślij ciekawy przypadek, zgłoś absurd, zaproponuj temat dziennikarzom.
Pomóż redagować portal.
Pomóż usprawnić system ochrony zdrowia.

Przegląd badań