Odkleszczowe zapalenie mózgu: aktualna sytuacja w Europie

08.07.2026
Tick‑borne encephalitis: An ancient pathology, but a current emergence in Europe
Baptiste Hoellinger, Assilina Parfut, Maëlle Grisard, Sandra Martin‑Latil, Julie Denis, Olivier Augereau, Guillaume Gregorowicz, Martin Martinot, Yves Hansmann, Aurélie Velay
komentarz: prof. dr hab. n. med. Joanna Zajkowska
Infectious Diseases Now, 2026 Jan;56(1):105187. doi: 10.1016/j.idnow.2025.105187

Tłumaczyła Zofia Mościcka
Komentarz: prof. dr hab. n. med. Joanna Zajkowska, Klinika Chorób Zakaźnych i Neuroinfekcji Uniwersytetu Medycznego w Białymstoku

Skróty: ECDC – European Centre for Disease Prevention and Control, KZM – odkleszczowe zapalenie mózgu, OIT – oddział intensywnej terapii, OUN – ośrodkowy układ nerwowy, PMR – płyn mózgowo-rdzeniowy

Translated from Baptiste Hoellinger, Assilina Parfut, Maëlle Grisard, et al., Tick-borne encephalitis: An ancient pathology, but a current emergence in Europe, Infectious Diseases Now 56(1), 105 187. https://doi.org/10.1016/j.idnow.2025.105187. Copyright 2026, with permission from Elsevier Masson SAS. Elsevier and its Societies take no responsibility for the accuracy of the translation from the published English original and are not liable for any errors which may occur.

Wprowadzenie

Wirus odkleszczowego zapalenia mózgu (KZM) to przenoszony przez kleszcze arbowirus należący do rodziny Flaviviridae, rodzaju Orthoflavivirus i gatunku Orthoflavivirus encephalitidis. International Committee on Taxonomy of Viruses uznał 3 główne podtypy wirusa KZM: europejski (inaczej środkowoeuropejski – przyp. red.), dalekowschodni i syberyjski. Niedawno zaproponowano też uznanie 4 nowych podtypów: obskiego, himalajskiego oraz bajkalskiego typu 1 i 2.1,2

Choć KZM, choroba wywoływana przez wirusa KZM, zaczęła się pojawiać w Europie (szczególnie we Francji) niedawno, dostępne dane historyczne wskazują, że wirus występuje u ludzi od wielu wieków. W XVIII-wiecznych fińskich księgach parafialnych znaleziono opisy chorób z objawami klinicznymi przypominającymi KZM. Podobne przypadki udokumentowano też w XIX wieku na Syberii i w innych zalesionych regionach Rosji, a w 1931 roku także w Austrii.3 Chociaż te wczesne doniesienia nie miały potwierdzenia wirusologicznego, wskazują na prawdopodobne długotrwałe krążenie wirusa.

Wirusowe pochodzenie zakażenia opisano po raz pierwszy na początku lat 30. XX wieku, kiedy u rosyjskich żołnierzy stacjonujących wzdłuż dalekiej, wschodniej granicy byłego Związku Radzieckiego stwierdzono ciężką, często śmiertelną chorobę ośrodkowego układu nerwowego (OUN). W 1937 roku profesor Lew A. Zilber przeprowadził z zespołem dochodzenie epidemiologiczne, w którym wykazano, że choroba przenosi się przez ukłucia kleszczy. Wyizolowano kilka szczepów nieznanego wcześniej wirusa, a chorobę początkowo określono mianem „wiosennego epidemicznego zapalenia mózgu” lub „KZM”.4

W Europie wirus KZM wyizolowano po raz pierwszy w 1939 roku z kleszczy bytujących w Białorusi. W 1948 roku wirus pozyskano zarówno od chorego, jak i kleszcza Ixodes ricinus zebranego w podejrzewanym regionie ukłucia w środkowej byłej Czechosłowacji.5 Wybuch epidemii w 1954 roku wskazał, że drogą transmisji może być także spożycie skażonego mleka.6

W ciągu ostatniej dekady epidemiologia KZM w Europie znacząco się zmieniła – zwiększyła się zachorowalność w krajach endemicznych oraz odkryto nowe ogniska zachorowań u ludzi i obszary występowania wirusa. W niniejszym artykule przeglądowym przedstawiono najnowsze dane naukowe dotyczące KZM, skupiając się na epidemiologii oraz klinicznych, diagnostycznych i terapeutycznych aspektach tego nowego zakażenia.

Drogi przenoszenia wirusa KZM

Cykl transmisji wektorowej

Wirus KZM utrzymuje się w środowisku naturalnym dzięki cyklowi obejmującemu wektor (kleszcz, głównie z rodzaju Ixodes) oraz naturalnych żywicieli, czyli małe ssaki (np. nornika rudego [Clethrionomys glareolus] lub mysz polną [Apodemus flavicollis, A. sylvaticus]).7 Europejski wirus KZM, przenoszony głównie przez kleszcze Ixodes ricinus, krąży w Europie Środkowej, Wschodniej i Północnej. Syberyjski wirus KZM, przenoszony przez I. ricinusI. persulcatus, krąży na Syberii i w Uralu, aż do krajów bałtyckich i Mołdawii, natomiast dalekowschodni wirus KZM, przenoszony przez I. persulcatus, krąży w skrajnie wschodnim regionie Rosji oraz w Azji Środkowej i Wschodniej, ale sięga też do krajów bałtyckich i Mołdawii.

Kleszcze mogą się zakazić wirusem KZM, żywiąc się krwią kręgowca będącego w fazie wiremii, poprzez transmisję między stadiami rozwojowymi podczas metamorfozy (z larwy w nimfę lub z nimfy w dorosłego osobnika), bezpośrednią transmisję do jaja przez samicę (transovarial; transmisja wertykalna), lub poprzez jednoczesne żerowanie kleszczy na tym samym żywicielu (tzn. z zakażonego kleszcza na zdrowego kleszcza podczas żywienia się krwią żywiciela, u którego nie występuje wiremia, jeśli oba kleszcze znajdują się obok siebie).

Wszyscy żywiciele kleszcza (ssaki, ptaki, gady) są podatni na zakażenie wirusem KZM, ale nie poznano jeszcze dobrze roli ptaków w tym procesie; uważa się, że przyczyniają się one do geograficznego rozprzestrzeniania się zakażonych kleszczy. Podobnie jak w przypadku innych ssaków średniej i dużej wielkości (zwierząt hodowlanych) ludzie są w tym cyklu żywicielem przypadkowym (p. ryc. 1).

Wirus KZM przenosi się na ludzi najczęściej poprzez ukłucie zakażonego kleszcza. W krajach europejskich główny okres transmisji trwa od wiosny do jesieni (okres aktywności kleszczy Ixodes).8

Niewektorowa transmisja wirusa KZM: droga pokarmowa

Ludzie mogą się również zakazić drogą pokarmową, spożywając niepasteryzowane produkty mleczne pochodzące od zakażonych przeżuwaczy (owiec, kóz i krów). Zakażone zwierzęta, zwykle bezobjawowe, mogą wydalać wirusa do mleka po 23 dniach wykrywalnej wiremii.9 Genom wirusa KZM jest stabilny do 48 h w mleku kozim i krowim w temperaturze odpowiednio 4°C i 21°C. Dezaktywacja termiczna jest skuteczna w mleku kozim, ale nie wystarcza do wyeliminowania wszystkich zakaźnych cząstek wirusa w mleku krowim.9

Uważa się, że w Europie Środkowej do zakażenia tą drogą dochodzi u około 1% chorych.10 W opisanych europejskich epidemiach źródłem zakażenia były głównie produkty z mleka koziego.10 Coraz większe zainteresowanie rzemieślniczymi i lokalnymi produktami spożywczymi, takimi jak sery z mleka surowego i inne produkty mleczne od drobnych wytwórców, może zwiększyć ryzyko narażenia na zakażenie wirusem KZM drogą pokarmową, szczególnie w regionach, w których nie potwierdzono jeszcze jego występowania.11

Niezależnie od krótkotrwałej wiremii zaobserwowanej w zakażeniu wirusem KZM, opisano rzadkie przypadki transmisji wirusa po przetoczeniu krwi lub przeszczepieniu narządu (ryc. 1).12 Wydaje się, że w przypadku zakażenia kobiety w ciąży nie dochodzi do transmisji wertykalnej wirusa KZM.13 Z drugiej strony, opisany niedawno przypadek podejrzenia przeniesienia wirusa na noworodka poprzez karmienie piersią oraz dane uzyskane na modelu mysim z wirusem zbliżonym do wirusa KZM (wirus Langat) sugerują, że transmisja poprzez karmienie piersią jest możliwa (p. Czy mleko kobiece może być drogą przenoszenia wirusa KZM od zakażonej matki na karmione piersią dziecko? – przyp. red.).14,15


Ryc. 1. Cykl transmisji wirusa odkleszczowego zapalenia mózgu i główne drogi zakażenia udokumentowane u ludzi

Trendy epidemiologiczne i nadzór nad KZM w Europie

Zmieniająca się epidemiologia KZM w Europie

W ciągu ostatniej dekady epidemiologia tej choroby arbowirusowej w Europie znacznie ewoluowała, co znalazło odzwierciedlenie w zwiększającej się zachorowalności w krajach endemicznych i pojawieniu się nowych skupisk przypadków u ludzi lub nowych obszarów krążenia wirusa.

W latach 1990–2009 w Europie odnotowano 62 842 przypadki KZM, głównie w Europie Środkowej, Skandynawii i krajach bałtyckich.16 Austria jest jedynym krajem, w którym stwierdzono zmniejszenie zachorowalności. Można to przypisać skutecznej kampanii szczepień rozpoczętej na początku lat 80. ubiegłego wieku i osiągnięciu wskaźnika wyszczepialności na poziomie 88%.17 W latach 1968–2003 w Alzacji (Francja) rozpoznano 64 przypadki autochtoniczne (1–9 przypadków/rok).18 Ustanowienie w 2012 roku europejskiej definicji przypadku KZM i wprowadzenie obowiązku zgłaszania zachorowań do European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC) poprawiło nadzór epidemiologiczny nad tą chorobą.

W latach 2012–2016 w 23–25 krajach europejskich zgłoszono 12 500 przypadków KZM, przy czym średni roczny wskaźnik zgłoszeń wynosił 0,54/100 000 mieszkańców. Choć większość tych przypadków wystąpiła w Czechach i Litwie, pojawiły się też nowe ogniska, na przykład w Holandii w 2016 roku.19 W tym samym roku zaobserwowano znaczne zwiększenie zachorowalności we Francji (29 przypadków), w Alzacji i regionie alpejskim.20

W latach 2017–2022 zgłoszono 20 196 przypadków KZM, a średni wskaźnik zgłaszalności wynosił 0,7/100 000 mieszkańców. Nowe ogniska pojawiły się w Anglii (2019) i Belgii (2020).21,22 We Francji w tym okresie zgłoszono 142 przypadki, w tym 46 w 2020 roku, i powiązano je z ogniskiem zachorowań po spożyciu skażonej żywności w Ain (Francja).23 Z powodu zwiększającej się liczby przypadków i epidemii w Ain w maju 2021 roku KZM objęto we Francji obowiązkiem zgłoszenia do nadzoru epidemiologicznego. Zwiększenie zachorowalności zaobserwowano w większości krajów europejskich, zwłaszcza w Niemczech, Włoszech, Norwegii, Słowenii i Szwajcarii.8 W 2020 roku, mimo pandemii COVID-19, zaobserwowano zwiększenie liczby przypadków zgłoszonych w okresie od kwietnia do sierpnia. W 2022 roku do ECDC zgłoszono 3650 przypadków KZM u ludzi, co wskazuje na stałe zwiększanie się zachorowalności (p. ryc. 2).8


Ryc. 2. Zmiany w epidemiologii odkleszczowego zapalenia mózgu w Europie w latach 2012–2022. Współczynnik zgłaszalności (liczba zgłoszonych potwierdzonych przypadków) na 100 000 osób (wg danych ECDC)

Narzędzia nadzoru epidemiologicznego

Nadzór epidemiologiczny nad patogenami przenoszonymi przez wektory (zwierzęta) często opiera się na kilku źródłach danych: (1) dotyczących zdrowia ludzi (zgłoszone przypadki, badania seroprewalencji), (2) dotyczących zdrowia zwierząt, danych obserwacyjnych, tzw. zwierząt wskaźnikowych oraz (3) danych z nadzoru nad wektorami (np. poszukiwanie kleszczy lub wykrywanie patogenów u wektorów).

Metody nadzoru różnią się w poszczególnych krajach europejskich, w zależności od lokalnych uwarunkowań epidemiologicznych. Metody wykrywania wirusa KZM u kleszczy nie są ustandaryzowane i różnią się nie tylko między krajami, ale nawet między zespołami badawczymi w obrębie jednego kraju. KZM przenosi się w obrębie mikroognisk – małych obszarów stałego krążenia wirusa. Nawet w obrębie znanych mikroognisk rozpowszechnienie wirusa w populacji kleszczy jest zwykle bardzo małe (<0,7% u dorosłych kleszczy w Alzacji; 0,1% w Danii; 0,2% w południowej Szwecji i 0,1% u nimf w południowo-wschodniej Norwegii).24,25 Zakładając, że częstość wynosi 0,3–1%, należałoby przebadać lokalnie przynajmniej 500–1000 kleszczy. Przedsięwzięcie na tak dużą skalę wymaga wielu zasobów i jest bardzo kosztowne.

Inne metody określania obszarów krążenia wirusa KZM obejmują wykrywanie genomu wirusa lub badania serologiczne u małych ssaków (gryzoni) oraz średnich i dużych ssaków, zarówno domowych (np. poprzez mleko krowie lub kozie), jak i dzikich.

Dzikie gryzonie, które są rezerwuarem wirusa KZM i tzw. żywicielem wzmacniającym (zwiększa namnażanie wirusa – przyp. red.), mają ograniczony obszar bytowania. Dlatego badanie próbek (w kierunku swoistych przeciwciał lub genomu wirusa) zapewnia wgląd w wyraźnie lokalne krążenie wirusa. Roczna seroprewalencja u małych ssaków na znanych obszarach występowania wirusa we Francji wynosi 1–5%, a w Bawarii – na obszarze o dużej transmisji – 10,5–19,4% (w zależności od gatunku gryzonia).25,26 W mikroogniskach o dużej transmisji w Litwie RNA wirusa KZM wykryto u 74,8% gryzoni.27 Ograniczeniem badań opartych na gryzoniach jest konieczność pobierania próbek z wielu lokalizacji w celu oszacowania krążenia na większym obszarze (np. całych regionów lub terytoriów).

Badania serologiczne u średnich i dużych ssaków mogą wykazać narażenie na wirusa u badanych kręgowców, wskazując tym samym na jego krążenie. Dzięki tej metodzie wirusa po razy pierwszy zidentyfikowano w Wielkiej Brytanii.21 Jednak identyfikacja niektórych gatunków ssaków jest ograniczona z powodu ich niejednolitego rozmieszczenia, przemieszczania się na dużych obszarach i trudności w uzyskaniu potrzebnej liczby próbek.

Rzeczywista epidemiologia zakażenia wirusem KZM u ludzi jest trudna do ustalenia, ponieważ wiele przypadków ma łagodny przebieg (z objawami grypopodobnymi) lub bezobjawowy. Badania seroprewalencji, zwłaszcza wśród dawców krwi lub w określonych grupach (np. dzieci, pracowników leśnych), oferują inny sposób szacowania narażenia na poziomie populacji niż zgłaszanie zachorowań do ECDC. Metodyka musi jednak wykluczać reakcję krzyżową między ortoflawiwirusami (dodatni wynik testu ELISA należy potwierdzić za pomocą testów neutralizacji), a także uwzględniać możliwe narażenie poza badanym obszarem (wywiad w kierunku niedawnych podróży) i odróżnić przeciwciała przeciwko wirusowi KZM od tych wytworzonych w odpowiedzi na szczepienie (np. za pomocą testu ELISA na obecność immunoglobulin G [IgG] przeciwko NS1). W ostatnich badaniach przeprowadzonych z udziałem dawców krwi stwierdzono, że mimo dużej wyszczepialności seroprewalencja związana z zakażeniem wynosi 0,1% w Danii (2022), 5,6% w południowo-zachodnich Niemczech (2021) i 2,7% w Austrii (2024).28-30

Obecnie w kilku badaniach stosuje się podejście „jedno zdrowie” (one health), które łączy wiele wskaźników (zbieranie kleszczy, seroprewalencja u zwierząt, dane dotyczące ludzi) w celu uzyskania jaśniejszego obrazu krążenia wirusa KZM w Europie.21

Wybrane czynniki wpływające na epidemiologię wirusa KZM

W ciągu ostatniej dekady zasięg geograficzny wirusa KZM rozszerzył się na północno-zachodnią część Europy. Do ekspansji prawdopodobnie przyczyniło się wiele czynników ekologicznych i środowiskowych (biotycznych i abiotycznych), a także większa świadomość choroby i poprawa postępowania diagnostycznego lekarzy oraz zmiany w zachowaniu ludzi (np. aktywność na świeżym powietrzu, spożywanie określonej żywności).31

Transmisja wirusa KZM wymaga warunków środowiskowych sprzyjających jego wektorowi – dużej wilgotności, umiarkowanego klimatu oraz pokrywy roślinnej korzystnej dla przetrwania i rozwoju kleszczy I. ricinus. Sezonowość KZM zbiega się z aktywnością I. ricinus, zwykle w okresie od maja do października, ze szczytem w lipcu i sierpniu. Wydaje się jednak, że okres ryzyka rozciąga się od marca do listopada, a podczas łagodnych zim nawet przez cały rok.32 Wzrastające temperatury (mniej mrozów zimą, wcześniejsza wiosna i późniejsza jesień) mogą wydłużyć okresy aktywności kleszczy, potencjalnie umożliwiając przenoszenie wirusa zimą.33

Kelly i wsp. zidentyfikowali czynniki wpływające na epidemiologię wirusa KZM swoiste dla różnych regionów Europy. Należą do nich: zmienność klimatu w Europie Środkowej, rezerwuary gryzoni i wysokość nad poziomem morza w krajach skandynawskich oraz gatunki żywicieli i typ roślinności w krajach bałtyckich.34 Wielkość terenów zalesionych (liściastych, iglastych lub mieszanych) znacząco wpływa na populacje żywicieli i rezerwuarów, natomiast gęste obszary miejskie o małej bioróżnorodności wiążą się ze zmniejszonym ryzykiem transmisji.35,36

Sezon przenoszenia wirusa KZM może się także wydłużyć w wyniku zaangażowania innego wektora – na przykład kleszczy Dermacentor reticulatus, których rozpowszechnienie znacznie się zwiększyło w kilku krajach europejskich. Dodatkowo D. reticulatus pozostaje aktywny w chłodniejszych miesiącach, przez co potencjalnie może uzupełniać aktywność I. ricinus.37

Czynniki ludzkie, takie jak zmiana sposobu spędzania wolnego czasu na świeżym powietrzu lub spożywanie niepasteryzowanych produktów mlecznych, są trudniejsze do oceny. W badaniu kliniczno-kontrolnym przeprowadzonym w południowych Niemczech (lata 2018–2020) wykazano zwiększone ryzyko KZM u osób, które posiadają ogrody w pobliżu lasów, często przebywają na świeżym powietrzu lub mają psy.38

Przebieg choroby, obraz kliniczny i rokowanie u osób zakażonych europejskim wirusem KZM

Przebieg naturalny choroby i obraz kliniczny

Po ukłuciu przez kleszcza okres wylęgania wynosi około 1 tygodnia (4–28 dni), często <15 dni, z medianą 3,5 dnia w przypadku transmisji drogą pokarmową.39,40 Przebieg kliniczny i stopień nasilenia objawów KZM są swoiste dla podtypu wirusa KZM. Zakażenia wywołane przez podtyp europejski i syberyjski wirusa KZM wydają się być łagodniejsze niż wywołane przez wirusa dalekowschodniego. Zakażenie podtypem europejskim zwykle przebiega w 2 fazach.5 Określenie rzeczywistej częstości bezobjawowych postaci zakażenia europejskim wirusem KZM jest trudne. Kiedyś powszechnie uznawano, że tylko 1/3 zakażeń przebiega objawowo, ale według nowszych szacunków (choć różnią się one w zależności od badania) liczba bezobjawowych przypadków może być większa i wynosić nawet 70–90%.41,42 Przynajmniej 1/3 pacjentów nie zgłasza wcześniejszego ukłucia przez kleszcza.43 Opisano (głównie w Rosji) rzadkie przewlekłe postaci zakażenia wirusem KZM (głównie podtypem dalekowschodnim), które charakteryzują się pogorszeniem stanu klinicznego później niż w fazie ostrej, ale ta jednostka kliniczna jest przedmiotem dyskusji, ponieważ obejmuje stare opisy przypadków i dotychczas nie zgłoszono takich przypadków po zakażeniu podtypem europejskim.44 Przebieg zakażenia podtypem europejskim wirusa KZM przedstawiono na rycinie 3.


Ryc. 3. Przebieg naturalny odkleszczowego zapalenia mózgu i kinetyka wskaźników wirusologicznych zakażenia podtypem europejskim wirusa

Faza pierwsza (gorączkowa)

W pierwszej fazie zakażenia, odpowiadającej okresowi wiremii, występują objawy grypopodobne, które utrzymują się przez około 7 dni (2–10 dni). Objawy obejmują gorączkę, łagodny ból głowy, ból mięśni, gorsze samopoczucie, rzadziej ból gardła lub objawy ze strony układu pokarmowego.39,43 Po tej fazie może nastąpić okres bezobjawowy, a przynajmniej poprawa objawów, z medianą trwania wynoszącą 7 dni (1–21 dni). Skąpoobjawowa postać KZM charakteryzuje się brakiem późniejszej fazy neuroinfekcji.39

Faza druga (neuroinfekcji)

Druga faza choroby (neuroinfekcja) charakteryzuje się nawrotem gorączki, której prawie zawsze towarzyszą objawy oponowe. Trudno określić odsetek pacjentów, u których choroba postępuje do fazy neurologicznej, ponieważ większość opisów serii przypadków dotyczy wyłącznie chorych z zajęciem układu nerwowego. Szacuje się, że w przypadku transmisji drogą pokarmową objawy neurologiczne wystąpią u 38% chorych.40 W badaniu z prospektywnym zbieraniem danych przeprowadzonym w Słowenii, z udziałem chorych, u których rozpoznanie ustalono w początkowej fazie gorączkowej, u 84% pacjentów choroba rozwinęła się do fazy neurologicznej.45 U 26–58% pacjentów na etapie objawów neurologiczno-oponowych nie stwierdzono klasycznego dwufazowego przebiegu.39,43,46

Istnieją 4 postaci kliniczne w fazie neurologicznej: najczęstszą jest zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych i mózgu (20–60% przypadków), następnie izolowane postaci oponowe (30–60% przypadków), zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, mózgu i rdzenia (4–15% przypadków) oraz rzadkie postaci zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych i rdzenia bez zapalenia mózgu (2,5%). Objawy opisywane w europejskich populacjach przedstawiono w tabeli 1. Zespół opuszkowy wydaje się być czynnikiem predykcyjnym zapalenia rdzenia.47

Tabela 1. Częstość objawów obserwowanych podczas fazy drugiej KZM w zależności od postaci neurologicznej
Objawy Postać neurologiczna
zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych (%) zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych i mózgu (%) zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, mózgu i rdzenia (%)
gorączka 94–96,443,47
ból głowy 92–9543,48
sztywność karku 74–9143,48
objaw Kerniga 40–6039,48
objaw Babińskiego 7–1548,49
wymioty 6043,48
zaburzenia świadomości 45–6039,46 70–8839,46
napady padaczkowe 1–339,43 1–639,43
ataksja 14–5539,46,48 6839
drżenie 539 21%39
niedowład kończyn 5–1239,47 97–10039,47,50
głównie niedowład obwodowy (monopareza kończyny, niedowład czterokończynowy > niedowład kończyn dolnych)
porażenie nerwów czaszkowych 2,5 (nerw odwodzący) 3–2939,43,46 25–45
zaburzenia czynności jelit bd 1339
zaburzenia pęcherza moczowego bd 2743
niewydolność oddechowa bd 12–4539,43,47
bd – brak danych, KZM – odkleszczowe zapalenie mózgu

Rokowanie

Do niekorzystnych czynników prognostycznych należą: zaawansowany wiek, choroby towarzyszące, zapalenie mózgu i w szczególności zapalenie rdzenia kręgowego.44,46,47 Częstość zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych i mózgu lub zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych, mózgu i rdzenia zwiększa się z wiekiem, osiągając szczyt w wieku 50–60 lat.39,40,43,48

Jeśli zakażenie postępuje do fazy neurologicznej, śmiertelność wynosi 6–15% dla podtypu dalekowschodniego i 2% dla podtypu syberyjskiego. Śmiertelność w przypadku zakażenia podtypem europejskim wynosi około 1%.5,43,51,52

Według danych dotyczących wyłącznie zakażenia podtypem europejskim wirusa KZM około 15% chorych jest przyjmowanych na oddział intensywnej terapii (OIT). U 1,7–8,1% pacjentów konieczne jest zastosowanie wentylacji mechanicznej.52 Częstość przyjęć na OIT (45–88%) i wentylacji mechanicznej (do 50%) jest znacząco większa w grupie pacjentów z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych, mózgu i rdzenia. W tej populacji wyraźnie większe są też śmiertelność i częstość umiarkowanych lub ciężkich powikłań (56–74%).39,46

Definicja i czas oceny powikłań różnią się w zależności od badania. W przeglądzie systematycznym piśmiennictwa wykazano, że u 49,8% pacjentów następstwa choroby występowały w momencie wypisu ze szpitala.52 W europejskim badaniu wieloośrodkowym przeprowadzonym w latach 2010–2017 stwierdzono, że u 59% pacjentów objawy utrzymywały się przy wypisie ze szpitala, przy czym u 50% pacjentów występowały objawy obiektywne, takie jak niedowład kończyn, ataksja lub drżenie, a u drugiej połowy objawy subiektywne, głównie ból głowy, ale też zaburzenia koncentracji, drażliwość, zaburzenia snu i chwiejność emocjonalna.43

U około 40% dorosłych występowały długotrwałe powikłania (≥12 mies. po zakażeniu).52 W ciężkich postaciach zakażenia u 30% pacjentów obserwowano ciężkie powikłania, zwłaszcza niedowład kończyn i ataksję.47

U dzieci zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych stanowi 63–97% neurologicznych postaci zakażenia. Zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, mózgu i rdzenia zdarza się wyjątkowo rzadko. Częstość przyjęć na OIT u dzieci i dorosłych jest podobna. Śmiertelność jest mniejsza (<0,5%), a powikłania wydają się występować rzadziej (do 31,3%).43,52,49

W badaniu przeprowadzonym metodą delficką z udziałem panelistów o różnych specjalizacjach (neurologia, choroby zakaźne, pediatria, immunologia, wirusologia i epidemiologia) z 8 krajów europejskich podkreślono potrzebę opracowania ustandaryzowanej kategoryzacji objawów klinicznych KZM w czasie leczenia. Eksperci uczestniczący w badaniu położyli nacisk na czas, w którym należy przeprowadzić ocenę, i zasugerowali, aby opracować także oddzielny system dla dzieci. Taki system kategoryzacji klinicznej poprawi opiekę nad pacjentami i będzie sprzyjać porównywaniu wyników różnych badań, co przyspieszy poprawę leczenia, udoskonalenie strategii szczepień i wzmocnienie nadzoru epidemiologicznego.53

Kiedy lekarz powinien zlecić badania w kierunku zakażenia wirusem KZM?

Obszary endemiczne

Przy ustalaniu etiologii wirusowego zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych lub zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych i mózgu powinno się systematycznie uwzględniać zakażenie wirusem KZM. Pacjentów z tej grupy należy kierować na swoiste badania diagnostyczne w kierunku tego zakażenia wykonywane z próbki krwi lub płynu mózgowo-rdzeniowego (PMR). Takie rozpoznanie należy również uwzględnić w zapaleniu rdzenia.

Obszary nieendemiczne lub o niskiej endemiczności w Europie, na których występuje wektor

W przypadku podejrzenia wirusowego zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych lub zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych i mózgu podejście etiologiczne powinno prowadzić do systematycznego skriningu w kierunku czynników ryzyka narażenia na zakażenie wirusem KZM, takich jak podróż na obszary endemiczne w niedalekiej przeszłości, ukłucie przez kleszcza lub spożycie sera z mleka surowego, zawód dużego ryzyka (rolnicy [również leśnicy – przyp. red.]) i występowanie podobnych przypadków w sąsiedztwie, co mogłoby ujawnić ognisko zachorowań.

Za wskazanie do swoistych badań diagnostycznych wykrywających wirusa KZM we krwi lub w PMR należy też uznać dwufazowy przebieg choroby, z fazą gorączkową poprzedzającą objawy neurologiczne (zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych lub zapalenie mózgu).

Badania laboratoryjne i obrazowe

Badania krwi i PMR

Podczas ustalania rozpoznania, co zazwyczaj odbywa się w fazie neurologicznej choroby, we krwi przeważnie nie stwierdza się żadnych nieprawidłowości, które mogłyby wskazywać na zakażenie arbowirusem. Najczęstsze odchylenia to umiarkowane zwiększenie stężenia białka C-reaktywnego, które czasami wiąże się z neutrofilią.39 Jeśli jednak rozpoznanie ustala się w fazie początkowej, u 88% pacjentów występuje leukopenia, u 59% małopłytkowość, a u 63% zwiększone stężenie aminotransferaz.45

W fazie neurologicznej badanie PMR ujawnia pleocytozę limfocytarną, zwykle <500/mm3. W przebiegu KZM zazwyczaj obserwuje się umiarkowanie zwiększone stężenie białka w PMR oraz prawidłowe stężenia glukozy i mleczanu. Stężenie białka jest znacznie większe w postaciach z zapaleniem mózgu lub zapaleniem mózgu i rdzenia (może nawet przekraczać 1 g/l) niż w postaciachprzebiegających tylko z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych.43,48

Obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego i elektroencefalogram

U >90% pacjentów z zapaleniem mózgu w elektroencefalogramie (EEG) występują takie zaburzenia, jak rozlane spowolnienie lub przerywane lokalne zaburzenia (ogniskowe).39

Badanie mózgu metodą rezonansu magnatycznego (MR) pokazuje nieprawidłowości tylko u około 1/5 pacjentów z zapaleniem mózgu. Nieprawidłowości są widoczne w sekwencji T2-zależnej lub sekwencji FLAIR, natomiast wzmocnienie po podaniu gadolinu w sekwencji T1-zależnej jest zmienne. Najczęściej zajęte jest wzgórze, a następnie zwoje podstawy mózgu oraz móżdżek i pień mózgu (rzadziej). Zmiany w korze występują rzadko. Z drugiej strony, wydaje się, że w postaci z zapaleniem rdzenia częściej obserwuje się podobne zmiany w MR, tzn. objawy zapalenia rdzenia, szczególnie w rogach przednich i wzmocnienie korzeni nerwowych.46,54

Potwierdzenie zakażenia wirusem KZM

Wykrywanie RNA wirusa

Do rozpoznania zakażenia wirusem KZM można wykorzystać różne metody i wskaźniki, głównie metody molekularne podczas pierwszej fazy choroby i serologiczne podczas fazy drugiej (neuroinfekcji).

W fazie pierwszej występuje przejściowa wiremia, co umożliwia wykrycie RNA wirusa we krwi. Jeśli jednak zakażenie przebiega objawowo, objawy kliniczne występujące w tej fazie są nieswoiste (objawy grypopodobne) i bardzo rzadko wymagają konsultacji lekarskiej oraz diagnostyki.55

Materiał genetyczny wirusa w PMR wykrywa się rzadko. Opisane przypadki dotyczyły chorych z bardzo ciężkim przebiegiem klinicznym z zajęciem mózgu oraz 1 chorego bez niedoboru odporności, który nie zgłosił chorób towarzyszących. W piśmiennictwie opisano także kilka przypadków chorych, u których RNA wirusa wykryto w moczu, a ostatnio również u pacjenta, u którego próbkę moczu pobrano niedługo (14 dni) po wystąpieniu objawów.55

Kinetyka odpowiedzi humoralnej i wykrywanie swoistych przeciwciał

W czasie występowania objawów ze strony OUN w surowicy można wykryć immunoglobuliny M (IgM) swoiste dla wirusa KZM. Ich stężenie zwiększa się w ciągu pierwszych 6 dni, po czym zmniejsza się w ciągu kolejnych 6 tygodni, choć mogą być wykrywalne przez kilka miesięcy. Stężenie IgG w surowicy zwiększa się stopniowo podczas fazy neurologicznej, osiągając szczyt około 6 tygodni po wystąpieniu objawów. Przeciwciała te utrzymują się u chorego przez całe życie i pomagają zapobiec ponownemu zakażeniu. Odpowiedź humoralna jest skierowana głównie przeciwko białku E i – w mniejszym stopniu – przeciwko białku NS1. Przeciwciała przeciwko białku NS1 chronią przed zakażeniem wirusem KZM,53 a ich wykrycie pozwala odróżnić zakażenie od odpowiedzi poszczepiennej, ponieważ białka niestrukturalne są produkowane głównie podczas replikacji wirusa.58,59 Przeciwciała anty-NS1 mogą się pojawić w odpowiedzi na szczepienie, ale ich stężenie na ogół jest znacznie mniejsze niż u zakażonych osób, co wskazuje na ograniczoną skuteczność ochronną tych przeciwciał indukowanych szczepieniem.60-62

Rola wewnątrzkanałowej produkcji przeciwciał OUN nie jest jeszcze dobrze znana. IgM przeciwko wirusowi KZM są wytwarzane lokalnie w OUN, co wskazuje, że muszą się do niego przedostawać komórki produkujące przeciwciała lub plazmablasty. Na początku objawów neurologicznych IgM przeciwko wirusowi KZM wykrywa się w PMR zaledwie u około 50% pacjentów, prawie zawsze w ciągu 10 dni, ze szczytem około 14 dni po wystąpieniu objawów. Stężenie IgG w PMR zwiększa się powoli i osiąga szczyt około 6 tygodni po wystąpieniu pierwszych objawów neurologicznych. W przeciwieństwie do IgM, IgG wykrywane w PMR często są przenoszone biernie, szczególnie w stanie zapalnym, który narusza barierę krew–mózg.63 Ponieważ pojawienie się przeciwciał przeciwko wirusowi KZM zbiega się w czasie z wystąpieniem objawów neurologicznych, rozpoznanie zakażenia tym wirusem najczęściej opiera się na badaniach serologicznych wykrywających te przeciwciała. Swoiste przeciwciała w klasie IgM i IgG można wykryć za pomocą komercyjnych zestawów ELISA o zadowalającej czułości, ale zmiennej swoistości. Wirusy należące do rodzaju ortoflawiwirusów charakteryzują się wysokim podobieństwem strukturalnym, co może być źródłem reakcji krzyżowej, szczególnie w przypadku przeciwciał w klasie IgG (ryzyko wyników fałszywie dodatnich). W związku z tym w przypadku dodatniego wyniku badania serologicznego (potwierdzone IgM lub IgG przeciwko wirusowi KZM) konieczna jest weryfikacja wywiadu w kierunku niedawnych podróży i wcześniejszych szczepień przeciwko żółtej gorączce, japońskiemu zapaleniu mózgu lub KZM. W przypadku pobytu lub zamieszkania w obszarze współwystępowania różnych ortoflawiwirusów dodatni wynik badania przeciwciał należy potwierdzić testami neutralizacji w celu wykluczenia możliwej reakcji krzyżowej.51 IgM wykrywa się w PMR około 10 dni po wystąpieniu zakażenia, a w tym celu należy użyć walidowanych zestawów ELISA przeznaczonych dla PMR.

Niektóre zespoły opracowały testy ELISA wykorzystujące rekombinowane białka NS1 europejskiego, dalekowschodniego i syberyjskiego podtypu KZM jako źródła antygenów, umożliwiając rozróżnienie przeciwciał swoistych dla każdego z nich.64 Ten rodzaj testu ELISA jest szczególnie wskazany dla obszarów geograficznych, w których krążą ≥2 podtypy wirusa KZM.

Inne zespoły opracowały test neutralizacji surowicy z wykorzystaniem pseudowirusów, który nie wymagałby pracy w laboratorium 3 stopnia poziomu bezpieczeństwa biologicznego, co jest konieczne w przypadku konwencjonalnych testów neutralizacji z wykorzystaniem szczepów wirusowych (wirus KZM jest czynnikiem biologicznym klasy 3).65

Opracowano również multipleksowe metody serologiczne łączące domenę DIII białka E z białkiem NS1, zwiększające czułość i swoistość testu.66

Zapobieganie, leczenie i podejście terapeutyczne na przyszłość

Zapobieganie

Szczepienia pozostają najskuteczniejszym sposobem ochrony przed wirusem KZM, uzupełniającym metody zapobiegania narażenia na kleszcze. W Europie dostępne są 2 szczepionki inaktywowane. Są one przygotowywane z 2 różnych szczepów europejskiego wirusa KZM: FMSE-IMMUN®, Pfizer (szczep Neudoerfl) i Encepur®, GSK Vaccines (szczep Karlsruhe K23). We Francji szczepionka FMSE-IMMUN nosi nazwę Ticovac® (różni się tylko nazwą handlową). Obie szczepionki charakteryzują się >92% skutecznością w zapobieganiu zakażeniom i >97% skutecznością w zapobieganiu hospitalizacjom związanym z KZM. We wszystkich grupach wiekowych poziom ochrony jest taki sam.67

Istnieje przyspieszony 3-dawkowy schemat szczepienia preparatem Encepur®, który jest szczególnie zalecany osobom podróżującym. Niemniej jednak 2 dawki szczepionki Ticovac® wydają się osiągać dużą skuteczność na ≥5 miesięcy, jeśli nie ma wystarczająco dużo czasu na przeprowadzenie całego podstawowego schematu szczepienia przed podróżą.68

Po podaniu 3 dawek szczepienia podstawowego wydłużenie odstępu między dawkami przypominającymi z 3–5 do 10 lat nie zmienia skuteczności szczepionek Encepur® i Ticovac® niezależnie od wieku, a może poprawić akceptowalność dawek przypominających i zwiększyć wyszczepialność. Obecnie taką strategię zaleca się w Szwajcarii, Finlandii i Belgii.69 Tolerancja szczepionki jest bardzo dobra. Najczęstsze niepożądane odczyny poszczepienne to ból w miejscu wkłucia, występujący u około 25% pacjentów, oraz objawy ogólne, takie jak zmęczenie i – rzadziej – gorączka (<5%).70 W badaniu z randomizacją obejmującym dzieci potwierdzono możliwość zamiennego stosowania obu szczepionek dla trzeciej dawki szczepienia podstawowego po uprzednim podaniu 2 dawek preparatu Encepur®71. Schematy szczepień, które zależą od preparatu, podsumowano w tabeli 2.

Tabela 2. Schematy szczepienia przeciwko KZM w zależności od preparatu
Schemat szczepienia Preparat szczepionkowy
FMSE-IMMUN© (Ticovac®):
0,5 ml dla dorosłych
0,25 ml dla dzieci w wieku
1–15 lat
Encepur®:
0,5 ml dla dorosłych
0,25 mla dla dzieci w wieku
1–12 lat
podstawowy:
1. dawka
2. dawka
3. dawka

dzień 0b
1–3 mies. po 1. dawce
5–12 po 2. dawce

dzień 0b
od 14 dni do 3 mies. po 1. dawce
9–12 mies. po 2. dawce
podstawowy przyspieszony 0, 14 dni, 5–12 mies. 0, 7, 21 dni (pierwsza dawka przypominająca po 12–18 mies.)
dawki przypominające pierwsza po 3 latach od zakończenia schematu podstawowego, następnie:
1) co 5 lat w wieku 16–59 lat
2) co 3 lata >60. rż.
pierwsza po 3 latach od zakończenia schematu podstawowego, następnie:
1) co 5 lat w wieku 12–49 lat
2) co 3 lata >50. rż.
a niedostępna we Francji (w Polsce dostępne są obie szczepionki, w dawce dla dzieci i dorosłych – przyp. red.)
b Dzień 0, czyli wybrany dzień – przyp. red.

Leczenie

Jak dotąd w Europie nie zarejestrowano żadnego swoistego leku przeciwwirusowego. Leczenie KZM jest zatem objawowe i ma na celu głównie zapobieganie powikłaniom oraz następstwom choroby.

Niektórzy stosowali deksametazon analogicznie jak w leczeniu bakteryjnego zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych. W badaniach obserwacyjnych z udziałem dorosłych i dzieci nie wykazano korzyści z takiego postępowania w zakresie zmniejszenia ryzyka powikłań, a może ono nawet wydłużać pobyt w szpitalu.44,48,49 Wyników tych nie oceniono jednak w zależności do stopnia ciężkości choroby, a długość hospitalizacji prawdopodobnie odzwierciedla fakt, że do tej pory deksametazon zazwyczaj stosowano u najciężej chorych.

Wcześniejsze publikacje skupiały się na szerokich badaniach znanych leków przeciwwirusowych lub antybiotyków (tunikamycyna, metysazon, amifenozyna, linkomycyna, iwermektyna, teikoplanina) w celu oceny ich skuteczności wobec wirusa KZM.72 Badane możliwości terapeutyczne skupiają się aktualnie na kluczowych etapach cyklu wirusowego. Kilka cząsteczek wykazało aktywność przeciwwirusową przeciwko wirusowi KZM w modelach in vitro i mysich.72 Na przykład inhibitory białka E mogą inaktywować wirusa KZM, jeśli są podawane in vitro przed wniknięciem wirusa do komórki lub w trakcie jego wnikania. Związki te nie są jednak w stanie zablokować replikacji wirusa w komórce.72 Zbadano kilka cząsteczek skierowanych przeciwko wirusowym polimerazom (NS5), ale niektóre z nich (zwłaszcza remdesiwir) prowadzą do mutacji skutkujących powstaniem oporności in vitro.72,73 Przeprowadzono również badania nad skutecznością cząsteczek o aktywności przeciwproteazowej (NS24–NS3).72

Niedawno odkryto, że białko LRP8 (białko pokrewne receptorowi dla lipoprotein o małej gęstości 8), receptor powierzchniowy o dużej ekspresji na neuronach i komórkach glejowych, jest swoistym receptorem wirusa KZM, który umożliwia wejście do komórki i internalizację wirusa oraz jest jednym z mechanizmów chorobotwórczości wirusa. Białko to stanowi zatem potencjalny cel terapeutyczny.74

Przedmiotem badań była również immunoterapia. Oceniono na przykład wstrzykiwanie swoistych dla wirusa KZM immunoglobulin wytwarzanych z osocza dawcy. Leczenie to zostało jednak zawieszone w Europie ze względu na ryzyko wystąpienia zjawiska wzmocnienia zakażenia zależnego od przeciwciał. Istnieją również doniesienia o zastosowaniu poliwalentnych immunoglobulin dożylnych w leczeniu zakażeń różnymi flawiwirusami. W 2 niedawno opublikowanych opisach przypadków wykazano skuteczność takiej terapii u chorego z agammaglobulinemią sprzężoną z chromosomem X w Szwecji oraz u chorego bez niedoboru odporności we Francji.75,76 Immunoglobuliny, zawierające swoiste IgG przeciwko wirusowi KZM, przygotowano przy użyciu osocza zdrowych dawców z kilku europejskich krajów. Potrzebne są dalsze badania dotyczące podawania rekombinowanych przeciwciał monoklonalnych.77

Podsumowanie

KZM to choroba arbowirusowa o ewoluującej epidemiologii, która występuje na coraz większym obszarze Europy północno-zachodniej. Oprócz dobrze znanej drogi przenoszenia choroby przez wektory, mamy też do czynienia z drogą pokarmową, co podkreśla potrzebę zwiększenia nadzoru. Chociaż śmiertelność z powodu KZM wywołanego podtypem europejskim wirusa jest mała, następstwa neurologiczne zajęcia OUN są częste i mogą być ciężkie. Wymaga to wprowadzenia ustandaryzowanych protokołów obserwacji klinicznej. Ze względu na brak swoistych interwencji terapeutycznych, szczepienia ochronne pozostają najskuteczniejszą metodą zapobiegania następstwom tej choroby.

Oświadczenie dotyczące konfliktu interesów: Autorzy oświadczają, że nie mają żadnych znanych konfliktów interesów finansowych ani relacji osobistych, które mogłyby mieć wpływ na treść niniejszego artykułu.

Piśmiennictwo:

1. Dai X, Shang G, et al. A new subtype of eastern tick-borne encephalitis virus discovered in Qinghai-Tibet Plateau. China Emerg Microbes Infect. 2018;7:74. https://doi.org/10.1038/s41426-018-0081-6
2. Deviatkin AA, Karganova GG, Vakulenko YA, Lukashev AN. TBEV Subtyping in terms of Genetic Distance. Viruses. 2020;12:1240. https://doi.org/10.3390/v12111240
3. Barrett PN, Schober-Bendixen S, Ehrlich HJ. History of TBE vaccines. Vaccine. 2003;21(Suppl 1):S41-S49. https://doi.org/10.1016/s0264-410x(02)00814–9
4. Zlobin VI, Pogodina VV, Kahl O. A brief history of the discovery of tick-borne encephalitis virus in the late 1930s (based on reminiscences of members of the expeditions, their colleagues, and relatives). Ticks Tick Borne Dis. 2017;8:813-820. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2017.05.001
5. Ruzek D, Avšič Županc T, Borde J, et al. Tick-borne encephalitis in Europe and Russia: Review of pathogenesis, clinical features, therapy, and vaccines. Antiviral Res. 2019;164:23-51. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2019.01.014
6. Daniel M, Benes C, Danielová V, Kríz B. Sixty years of research of tick-borne encephalitis–a basis of the current knowledge of the epidemiological situation in Central Europe. Epidemiol Mikrobiol Imunol. 2011;60:135-155
7. Valarcher JF, Hägglund S, Juremalm M, et al. Tick-borne encephalitis. Rev Sci Tech. 2015;34:453-466. 10.20506/rst.34.2.2371
8. European Centre for Disease Prevention and Control [Internet]. 2024. Surveillance report. Tick-borne encephalitis. Annual epidemiological report for 2022. www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/documents/tick-borne-encephalistis-annual-epidemiological-report-2022_0.pdf (dostęp: 11.11.2025)
9. Mathews-Martin L, Migné CV, Mariteragi-Helle T, et al. Persistence of Tick-Borne Encephalitis Virus in Goat and Cow Milks under Different Storage Conditions and following thermal Inactivation. Food Environ Virol. 2025;17:26. https://doi.org/10.1007/s12560-025-09641-7
10. Ličková M, Fumačová Havlíková S, Sláviková M, Klempa B. Alimentary Infections by Tick-Borne Encephalitis Virus. Viruses. 2021;14:56. https://doi.org/10.3390/v14010056
11. Tomassone L, Martello E, Mannelli A, et al. A Systematic Review on the Prevalence of Tick-Borne Encephalitis Virus in Milk and Milk Products in Europe. Zoonoses Public Health. 2025;72:248-258. https://doi.org/10.1111/zph.13216
12. Lipowski D, Popiel M, Perlejewski K, et al. A Cluster of Fatal Tick-borne Encephalitis Virus Infection in Organ Transplant setting. J Infect Dis. 2017;215:896-901. https://doi.org/10.1093/infdis/jix040
13. Velay A, Janssen-Langenstein R, Kremer S, et al. Tick-Borne Encephalitis in Pregnant Woman and Long-Term Sequelae. Emerg Infect Dis. 2023;29:669-671. https://doi.org/10.3201/eid2903.221328
14. Kerlik J, Avdičová M, Musilová M, et al. Breast Milk as Route of Tick-Borne Encephalitis Virus Transmission from Mother to Infant. Emerg Infect Dis. 2022;28:1060-1061. https://doi.org/10.3201/eid2805.212457
15. Miao Y, Zheng Y, Wang T, et al. Breast milk transmission and involvement of mammary glands in tick-borne flavivirus infected mice. J Virol. 2024;98:e0170923. https://doi.org/10.1128/jvi.01709–23
16. Süss J. Tick-borne encephalitis 2010: epidemiology, risk areas, and virus strains in Europe and Asia-an overview. Ticks Tick Borne Dis. 2011;2:2-15. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2010.10.007
17. Kunze U; ISW TBE. Conference report of the 10th meeting of the international scientific working group on tick-borne encephalitis (ISW-TBE): Combating tick-borne encephalitis: Vaccination rates on the rise. Vaccine. 2008;26(52):6738-6740. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2008.10.059
18. Hansmann Y, Pierre Gut J, Remy V, et al. Tick-borne encephalitis in eastern France. Scand J Infect Dis. 2006;38:520-526. https://doi.org/10.1080/00365540600585073
19. Van Heuverswyn J, Hallmaier-Wacker LK, Beauté J, et al. Spatiotemporal spread of tick-borne encephalitis in the EU/EEA, 2012 to 2020. Euro Surveill. 2023;28:2200543. https://doi.org/10.2807/1560–7917.ES.2023.28.11.2200543
20. Velay A, Solis M, Kack-Kack W, et al. A new hot spot for tick-borne encephalitis (TBE): a marked increase of TBE cases in France in 2016. Ticks Tick Borne Dis. 2018;9:120-125. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2017.09.015
21. Callaby H, Beard KR, Wakerley D, et al. Tick-borne encephalitis: from tick surveillance to the first confirmed human cases, the United Kingdom, 2015 to 2023. Euro Surveill. 2025;30:2400404. https://doi.org/10.2807/1560–7917.ES.2025.30.5.2400404
22. Stoefs A, Heyndrickx L, De Winter J, et al. Autochthonous cases of Tick-Borne Encephalitis, Belgium, 2020. Emerg Infect Dis. 2021;27(8):2179-2182. https://doi.org/10.3201/eid2708.211175
23. Gonzalez G, Bournez L, Moraes RA, et al. A One-Health Approach to investigating an Outbreak of Alimentary Tick-Borne Encephalitis in a Non-endemic Area in France (Ain, Eastern France): a Longitudinal Serological Study in livestock, Detection in Ticks, and the first Tick-Borne Encephalitis Virus Isolation and Molecular Characterisation. Front Microbiol. 2022;13:863725. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.863725
24. Lamsal A, Edgar KS, Jenkins A, et al. Prevalence of tick-borne encephalitis virus in questing Ixodes ricinus nymphs in southern Scandinavia and the possible influence of meteorological factors. Zoonoses Public Health. 2023;70:473-484. ""https://doi.org/10.1111/zph.13049
25. Bournez L, Umhang G, Moinet M, et al. Tick-Borne Encephalitis Virus: Seasonal and Annual Variation of Epidemiological Parameters Related to Nymph-to-Larva Transmission and Exposure of Small Mammals. Pathogens. 2020;9:518. https://doi.org/10.3390/pathogens9070518
26. Brandenburg PJ, Obiegala A, Schmuck HM, et al. Seroprevalence of Tick-Borne Encephalitis (TBE) Virus Antibodies in Wild Rodents from two Natural TBE Foci in Bavaria. Germany Pathogens. 2023;12:185. https://doi.org/10.3390/pathogens12020185
27. Simkute E, Pautienius A, Grigas J, et al. The Prevalence of Tick-Borne Encephalitis Virus in Wild Rodents Captured in Tick-Borne Encephalitis Foci in Highly Endemic Lithuania. Viruses. 2024;16:444. https://doi.org/10.3390/v16030444
28. Siller A, Chitimia-Dobler L, Hitzl W, et al. Tick-Borne Encephalitis Virus Surveillance-Vaccination- and Infection-Induced Seroprevalences in Western Austria 2024. J Med Virol. 2024;96:e70109. https://doi.org/10.1002/jmv.70109
29. Euringer K, Girl P, Kaier K, et al. Tick-borne encephalitis virus IgG antibody surveillance: vaccination- and infection-induced seroprevalences, south-western Germany, 2021. Euro Surveill. 2023;28:2200408. https://doi.org/10.2807/1560–7917.ES.2023.28.12.2200408
30. Hansen MF, Gynthersen RMM, Ocias LF, et al. A serosurvey examining exposure to Borrelia burgdorferi sensu lato and tick-borne encephalitis virus in danish blood donors, August 2022. IJID Reg. 2024;12:100414. https://doi.org/10.1016/j.ijregi.2024.100414
31. Saegerman C, Humblet MF, Leandri M, et al. First Expert Elicitation of Knowledge on possible Drivers of Observed increasing Human cases of Tick-Borne Encephalitis in Europe. Viruses. 2023;15:791. https://doi.org/10.3390/v15030791
32. Bago J, Bjedov L, Vucelja M, et al. The Influence of Biogeographic Diversity, climate and Wildlife on the Incidence of Tick-Borne Encephalitis in Croatia. Viruses. 2025;17:266. https://doi.org/10.3390/v17020266
33. Dagostin F, Tagliapietra V, Marini G, et al. Ecological and environmental factors affecting the risk of tick-borne encephalitis in Europe, 2017 to 2021. Euro Surveill. 2023;28:2300121. https://doi.org/10.2807/1560–7917.ES.2023.28.42.2300121
34. Kelly PH, Kwark R, Marick HM, et al. Different environmental factors predict the occurrence of tick-borne encephalitis virus (TBEV) and reveal new potential risk areas across Europe via geospatial models. Int J Health Geogr. 2025;24:3. https://doi.org/10.1186/s12942-025-00388-9
35. Marini G, Tagliapietra V, Cristofolini F, et al. Correlation between airborne pollen data and the risk of tick-borne encephalitis in northern Italy. Sci Rep. 2023;13:8262. https://doi.org/10.1038/s41598-023-35478-w
36. Dagostin F, Tagliapietra V, Marini G, et al. High habitat richness reduces the risk of tick-borne encephalitis in Europe: a multi-scale study. One Health. 2024;18:100669. https://doi.org/10.1016/j.onehlt.2023.100669
37. Ličková M, Fumačová Havlíková S, Sláviková M, et al. Dermacentor reticulatus is a vector of tick-borne encephalitis virus. Ticks Tick Borne Dis. 2020;11:101414. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2020.101414
38. Nygren TM, Pilic A, Böhmer MM, et al. Tick-Borne Encephalitis Risk increases with Dog Ownership, frequent Walks, and Gardening: a Case-Control Study in Germany 2018–2020. Microorganisms. 2022;10:690. https://doi.org/10.3390/microorganisms10040690
39. Kaiser R. The clinical and epidemiological profile of tick-borne encephalitis in southern Germany 1994–98: a prospective study of 656 patients. Brain. 1999;122(Pt11):2067-2078. https://doi.org/10.1093/brain/122.11.2067
40. Elbaz M, Gadoth A, Shepshelovich D, et al. Systematic Review and Meta-analysis of Foodborne Tick-Borne Encephalitis, Europe, 1980–2021. Emerg Infect Dis. 2022;28:1945- 1954. https://doi.org/10.3201/eid2810.220498
41. Albinsson B, Hoffman T, Kolstad L, et al. Seroprevalence of tick-borne encephalitis virus and vaccination coverage of tick-borne encephalitis, Sweden, 2018 to 2019. Euro Surveill. 2024;29(2):2300221. https://doi.org/10.2807/1560–7917.ES.2024.29.2.2300221
42. Brechet A, Kohler P, Dörr T, et al. Tick-borne encephalitis virus seroprevalence and infection incidence in Switzerland, 2020–2021. Sci Rep. 2025;15(1):8346. https://doi.org/10.1038/s41598-025-92560-1
43. Kohlmaier B, Schweintzger NA, Sagmeister MG, et al. Clinical Characteristics of patients with Tick-Borne Encephalitis (TBE): a European Multicentre Study from 2010 to 2017. Microorganisms. 2021;9:1420. https://doi.org/10.3390/microorganisms9071420
44. Mickiene A, Laiškonis A, Günther G, et al. Tickborne Encephalitis in an Area of High Endemicity in Lithuania: Disease Severity and Long-Term Prognosis. Clin Infect Dis. 2002;35:650-658. https://doi.org/10.1086/342059
45. Bogovič P, Kastrin A, Lotrič-Furlan S, et al. Clinical and Laboratory Characteristics and Outcome of Illness Caused by Tick-Borne Encephalitis Virus without Central nervous System Involvement. Emerg Infect Dis. 2022;28:291-301. https://doi.org/10.3201/eid2802.211661
46. Lenhard T, Ott D, Jakob NJ, et al. Predictors, Neuroimaging Characteristics and Long-Term Outcome of Severe European Tick-Borne Encephalitis: a prospective Cohort Study. PLoS One. 2016;11:e0154143. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0154143
47. Radzišauskiene D, Urboniene J, Kaubrys G, et al. The epidemiology, clinical presentation, and predictors of severe Tick-borne encephalitis in Lithuania, a highly endemic country: a retrospective study of 1040 patients. PLoS One. 2020;15:e0241587. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0241587
48. Czupryna P, Moniuszko A, Pancewicz SA, et al. Tick-borne encephalitis in Poland in years 1993–2008 – epidemiology and clinical presentation. a retrospective study of 687 patients. Eur J Neurol. 2011;18:673-679. https://doi.org/10.1111/j.1468–1331.2010.03278.x
49. Krawczuk K, Czupryna P, Pancewicz S, et al. Comparison of tick-borne encephalitis between children and adults-analysis of 669 patients. J Neurovirol. 2020;26:565-571. https://doi.org/10.1007/s13365-020-00856-x
50. Smíšková D, Pícha D, Slížek M, Džupová O. Paretic complications of tick-borne encephalitis and Lyme neuroborreliosis in the Czech Republic: Characteristics and clinical outcome. Ticks Tick Borne Dis. 2024;15:102302. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2023.102302
51. Taba P, Schmutzhard E, Forsberg P, et al. EAN consensus review on prevention, diagnosis and management of tick-borne encephalitis. Eur J Neurol. 2017;24:1214-e61. https://doi.org/10.1111/ene.13356
52. Halsby K, Gildea L, Madhava H, et al. Clinical manifestations and outcomes of Tick-borne encephalitis: a systematic literature review. Ticks Tick Borne Dis. 2024;15:102407. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2024.102407
53. Halsby K, Dobler G, Easton A, et al. Evaluating the need for standardised disease manifestation categories in patients infected with the tick-borne encephalitis virus: a Delphi panel. Ticks Tick-borne Dis. 2025;16:102431. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2024.102431
54. Zawadzki R, Garkowski A, Kubas B, et al. Evaluation of Imaging Methods in Tick-Borne Encephalitis. Pol J Radiol. 2017;82:742-747. 10.12659/PJR.903940
55. Kriha MF, Kamis J, Dvorakova M, et al. Detection of tick-borne encephalitis virus RNA in patient samples at different stages of infection. J Infect. 2025;90:106481. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2025.106481
56. Veje M, Studahl M, Norberg P, et al. Detection of tick-borne encephalitis virus RNA in urine. J Clin Microbiol. 2014;52(11):4111-4112. https://doi.org/10.1128/JCM.02428–14
57. Caracciolo I, Bassetti M, Paladini G, et al. Persistent viremia and urine shedding of tick-borne encephalitis virus in an infected immunosuppressed patient from a new epidemic cluster in North-Eastern Italy. J Clin Virol. 2015;69:48-51. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2015.05.019
58. Albinsson B, Vene S, Rombo L, et al. Distinction between serological responses following tick-borne encephalitis virus (TBEV) infection vs vaccination, Sweden 2017. Euro Surveill. 2018;23(3):17-00838. https://doi.org/10.2807/1560–7917.ES.2018.23.3.17–00838
59. Girl P, Bestehorn-Willmann M, Zange S, et al. Tick-Borne Encephalitis Virus Nonstructural Protein 1 IgG Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Differentiating Infection versus Vaccination Antibody responses. J Clin Microbiol. 2020;58:e01783-e01819. https://doi.org/10.1128/JCM.01783–19
60. Salat J, Mikulasek K, Larralde O, et al. Tick-Borne Encephalitis Virus Vaccines Contain Non-Structural Protein 1 Antigen and may Elicit NS1-specific Antibody responses in Vaccinated individuals. Vaccines (Basel). 2020;8:81. https://doi.org/10.3390/vaccines8010081
61. Stiasny K, Leitner A, Holzmann H, Heinz FX. Dynamics and Extent of Non-Structural Protein 1-Antibody responses in Tick-Borne Encephalitis Vaccination Breakthroughs and Unvaccinated patients. Viruses. 2021;13:1007. https://doi.org/10.3390/v13061007
62. Ackermann-Gäumann R, Brechet A, Smetana J, et al. Vaccination against tick-borne encephalitis elicits a detectable NS1 IgG antibody response. J Virol Methods. 2023;322:114831. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2023.114831
63. Günther G, Haglund M, Lindquist L, et al. Intrathecal IgM, IgA and IgG antibody response in tick-borne encephalitis. Long-term follow-up related to clinical course and outcome. Clin Diagn Virol. 1997;8(1):17-29. 10.1016/s0928-0197(97)00273–0. Erratum in: Clin Diagn Virol. 1997;8(2): 167-168
64. Freimane Z, Dobler G, Chitimia-Dobler L, et al. Development and validation of a novel enzyme-linked immunosorbent assay for the differentiation of tick-borne encephalitis infections caused by different virus subtypes. Infection. 2025;53:297-306. https://doi.org/10.1007/s15010-024-02370-2
65. Ackermann-Gäumann R, Dentand A, Lienhard R, et al. A reporter virus particle seroneutralization assay for tick-borne encephalitis virus overcomes ELISA limitations. J Med Virol. 2024;96:e29843. https://doi.org/10.1002/jmv.29843
66. Valle C, Shrestha S, Godeke G-J, et al. Multiplex Serology for Sensitive and specific Flavivirus IgG Detection: Addition of Envelope Protein Domain III to NS1 increases Sensitivity for Tick-Borne Encephalitis Virus IgG Detection. Viruses. 2024;16:286. https://doi.org/10.3390/v16020286
67. Angulo FJ, Zhang P, Halsby K, et al. A systematic literature review of the effectiveness of tick-borne encephalitis vaccines in Europe. Vaccine. 2023;41:6914-6921. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2023.10.014
68. Pugh SJ, Moisi JC, Kundi M, et al. Effectiveness of two doses of tick-borne encephalitis (TBE) vaccine. J Travel Med. 2022;29:taab193. https://doi.org/10.1093/jtm/taab193
69. Schelling J, Einmahl S, Torgler R, Larsen CS. Evidence for a 10-year TBE vaccine booster interval: an evaluation of current data. Expert Rev Vaccines. 2024;23: 226–236. https://doi.org/10.1080/14760584.2024.2311359
70. Rampa JE, Askling HH, Lang P, et al. Immunogenicity and safety of the tick-borne encephalitis vaccination (2009–2019): a systematic review. Travel Med Infect Dis. 2020;37:101876. https://doi.org/10.1016/j.tmaid.2020.101876
71. Prymula R, Pöllabauer EM, Pavlova BG, et al. Antibody persistence after two vaccinations with either FSME-IMMUN® junior or ENCEPUR® Children followed by third vaccination with FSME-IMMUN® junior. Hum Vaccin Immunother. 2012;8:736-742. https://doi.org/10.4161/hv.20058
72. Eyer L, Seley-Radtke K, Ruzek D. New directions in the experimental therapy of tick-borne encephalitis. Antiviral Res. 2023;210:105504. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2022.105504
73. Nyström K, Trybala E, Said J, et al. Remdesivir is active in vitro against tick-borne encephalitis virus and selects for resistance mutations in the viral RNA-dependent RNA polymerase. Infect Dis (Lond). 2025;57(7):628-635. https://doi.org/10.1080/23744235.2025.2468510
74. Mittler E, Tse AL, Tran PT, et al. LRP8 is a receptor for tick-borne encephalitis virus. Nature. 2025;646(8086):945-952. https://doi.org/10.1038/s41586-025-09500-2
75. Dalmas P, Kaphan E, Mortier C, et al. An autochthonous case of severe tick-borne encephalitis virus associated meningoencephalitis in France: is there a place for polyvalent intravenous immunoglobulins? IDCases. 2025;40:e02213. https://doi.org/10.1016/j.idcr.2025.e02213
76. Hedin W, Bergman P, Akhirunessa M, et al. Severe Tick-Borne Encephalitis (TBE) in a Patient with X-Linked Agammaglobulinemia; Treatment with TBE Virus IgG positive Plasma, Clinical Outcome and T Cell responses. J Clin Immunol. 2024;44:116. https://doi.org/10.1007/s10875-024-01718-5
77. Ormundo LF, Barreto CT, Tsuruta LR. Development of Therapeutic Monoclonal Antibodies for Emerging Arbovirus Infections. Viruses. 2023;15:2177. https://doi.org/10.3390/v15112177

Komentarz

prof. dr hab. n. med. Joanna Zajkowska
Klinika Chorób Zakaźnych i Neuroinfekcji Uniwersytetu Medycznego w Białymstoku

Odkleszczowe zapalenie mózgu (KZM) i borelioza są najczęstszymi i najbardziej rozpowszechnionymi zakażeniami przenoszonymi przez kleszcze w Europie. Od 20 lat obserwuje się ekspansję geograficzną kleszczy będących wektorami choroby oraz coraz większy odsetek zakażonych kleszczy. W tym czasie zwiększyła się także świadomość istnienia tych chorób oraz udoskonaliła się ich diagnostyka.1 Komentowany artykuł przeglądowy Hoellingera i wsp. trafnie podsumowuje aktualną wiedzę dotyczącą KZM, jako choroby o coraz większym znaczeniu epidemiologicznym w Europie.

W Polsce nadzór epidemiologiczny obejmuje postaci neurologiczne zakażenia wirusem KZM u osób hospitalizowanych. W 1993 roku w wielu krajach Europy o podobnych warunkach środowiskowych i klimatycznych, w tym w krajach nadbałtyckich, w Niemczech, Czechach i Austrii, znacznie zwiększyła się liczba zachorowań na KZM (p. ryc. 4), co skłoniło naukowców do przeprowadzenia badań przekrojowych poszukujących przyczyn tej obserwacji (program EDEN).2,3 Pierwsze autochtoniczne przypadki KZM zaczęto też rozpoznawać w krajach dotychczas uznawanych za wolne od endemicznego wirusa KZM, takich jak Holandia, Belgia, Włochy (region Emilia-Romania), a ostatnio także Wielka Brytania, gdzie występowanie zakażonych kleszczy tłumaczy się zmianą szlaków migracyjnych ptaków w związku ze zmianami klimatycznymi.4-7


Ryc 4. Liczba przypadków odkleszczowego zapalania mózgu zgłaszanych w Polsce w latach 1971–2025 (na podstawie danych NIZP PZH–PIB)

Wyniki wielu badań przeprowadzonych w ramach koncepcji one health (zakłada, że zdrowie ludzi, zwierząt i stan środowiska są ze sobą ściśle powiązane; jednym z celów jest skuteczniejsze zapobieganie chorobom, zwłaszcza odzwierzęcym – przyp. red.) wskazują, że jest to zjawisko wieloczynnikowe. Wirus KZM krąży w złożonym ekosystemie między kleszczami a zwierzętami (takimi jak małe ssaki i jeleniowate) w określonych warunkach środowiska (p. także ryc. 1). Zmiany dotyczące jednego czynnika mogą wpływać na cały ekosystem.8 Wzrost temperatury wpływa na liczebność i zachowania żywicieli – szczególnie widoczny jest wpływ łagodnych zim na przeżywalność drobnych zwierząt będących najliczniejszymi żywicielami kleszczy, a także na przyspieszenie tempa rozwoju kleszczy oraz wydłużenie ich aktywności sezonowej.1-3 Ale nie tylko większa liczba kleszczy i ich dłuższa aktywność zwiększają ryzyko zakażenia wirusem KZM. Zmiany klimatyczne mogą wpływać na geograficzne rozprzestrzenianie się kleszczy, ponieważ na coraz większych obszarach panują warunki korzystne dla ich życia i rozwoju.9 Zmiany klimatyczne mogą także wpływać na dostępność pożywienia i siedliska dla zwierząt, które pełnią rolę rezerwuarów wirusa KZM. W efekcie zachodzące zmiany mogą sprzyjać przenoszeniu się kleszczy i wirusa KZM na obszary, w których wcześniej nie występowały, co może zwiększać ryzyko zakażenia dla populacji ludzi.10-12 Podsumowując, zmiany w ekosystemach, warunkach atmosferycznych i klimatycznych mogą wpływać na epidemiologię KZM, zwiększając ryzyko tej choroby na nowych obszarach lub modyfikując jej sezonowość.13 Dlatego ważne jest monitorowanie tych zmian i dostosowywanie strategii profilaktycznych oraz środków ochrony zdrowia publicznego do zmieniających się warunków środowiskowych.

Zmiany w epidemiologii KZM opisane w artykule Hoellingera i wsp. są wyraźnie widoczne także w Polsce. Od kilku lat systematycznie zwiększa się liczba zgłaszanych zachorowań oraz rozszerza się obszar endemiczny, poza klasycznie uznawany region północno-wschodni (woj. podlaskie i warmińsko-mazurskie).14 Coraz częściej rejestrowane są przypadki KZM w centralnej i południowej Polsce, co sugeruje zarówno rzeczywistą ekspansję wirusa, jak i poprawę rozpoznawalności choroby.15,16

W 2012 roku w krajach Unii Europejskiej (UE) wprowadzono obowiązek zgłaszania przypadków KZM, co pozwala na dokładniejszą obserwację zmian w epidemiologii tej choroby. W niektórych krajach UE liczba zachorowań zwiększa się mimo wprowadzenia programów szczepień. Coraz więcej zachorowań notuje się zarówno na północy, w krajach skandynawskich, jak i na południu, m.in. we Francji, na co zwracają uwagę autorzy komentowanego artykułu.6,17 Badania przeprowadzone w Czechach wskazują na zwiększoną liczbę zachorowań i transmisję wirusa KZM na wyższych wysokościach.

Autorzy artykułu dokładnie omówili proces rozpoznawania KZM, podkreślając najważniejszą rolę badań serologicznych, z uwzględnieniem ryzyka reakcji krzyżowych z innymi wirusami. Zwrócili też uwagę, że badania metodą reakcji łańcuchowej polimerazy (PCR) wykrywające RNA wirusa nie są przydatne w postępowaniu diagnostycznym – są trudne metodycznie, a wirus jest dostępny w  surowicy krótko (tylko w fazie pierwszej, kiedy zwykle pacjent nie zgłasza się jeszcze na konsultację albo nie bierze się pod uwagę ryzyka neuroinfekcji). Jednak badanie PCR jest ważne dla tzw. epidemiologii molekularnej, ponieważ dostarcza wiele informacji o lokalnym rezerwuarze zwierzęcym wirusa oraz regionalnych wariantach jego rozprzestrzeniania się w środowisku. Z badań tych wiemy, że w Polsce zachodniej krąży taki sam wirus jak w Niemczech, a w Polsce północnej taki jak w krajach nadbałtyckich (np. w Estonii).18

W Polsce diagnostyka KZM opiera się niemal wyłącznie na wykrywaniu swoistych przeciwciał IgM i IgG w surowicy oraz – w uzasadnionych przypadkach – w płynie mózgowo-rdzeniowym. W praktyce klinicznej rozpoznanie zwykle ustala się w fazie neuroinfekcji. Ponieważ w Polsce nie ma rodzimych zakażeń wirusem gorączki zachodniego Nilu, w przeciwieństwie do części krajów Europy Zachodniej, testy neutralizacji lub oznaczenia przeciwciał anty-NS1 nie są rutynowo dostępne, co może utrudniać różnicowanie zakażenia wirusem KZM od odpowiedzi poszczepiennej oraz ocenę reakcji krzyżowych z innymi flawiwirusami.

Autorzy artykułu zwrócili także uwagę na przenoszenie zakażenia drogą pokarmową. Największa epidemia KZM miała miejsce w 1951 roku w byłej Czechosłowacji, kiedy odnotowano >600 zachorowań po spożyciu zakażonego, niepasteryzowanego mleka owczego i koziego.19 Średni czas wylęgania w przypadku zakażenia drogą pokarmową jest krótszy – objawy mogą się pojawić już po upływie 3,5 dnia. Autorzy artykułu zwracają uwagę na pojawianie się zachorowań we Francji. Pierwsza epidemia KZM wystąpiła tam w kwietniu 2020 roku, a wirus nigdy wcześniej nie był tam identyfikowany. Zespół badawczy wykorzystał podejście one health do zbadania tej epidemii i wykazał, że 42 z 43 przypadków KZM było związanych właśnie ze spożyciem sera z niepasteryzowanego mleka koziego od lokalnego producenta, co odzwierciedla globalny trend w kierunku konsumpcji lokalnych i tradycyjnie przygotowywanych potraw.20 Podobne epidemie odnotowano w Austrii, Czechach i Polsce.21,22 W Austrii popularność zdobyła koza Bianka, która także była źródłem „epidemii mlecznej”. Unikanie niepasteryzowanych produktów mlecznych w obszarach endemicznych KZM jest – obok szczepień ochronnych – kluczowe w ograniczeniu liczby zakażeń.

Dane o liczbie zakażeń są niedoszacowane, ponieważ nie są raportowane zgodnie z oficjalną definicją przypadku przyjętą w Europie w 2012 roku, obejmującą zakażenia wirusem KZM bez oznak zajęcia ośrodkowego układu nerwowego (OUN).23 Rzetelna ocena liczby zakażeń KZM w populacji polskiej byłaby bliższa rzeczywistości, gdyby KZM uwzględniano w diagnostyce różnicowej u wszystkich pacjentów z gorączką nieznanego pochodzenia lub objawami zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych i/lub mózgu o nieustalonej etiologii.14,24-26

W populacyjnym badaniu przekrojowym z retrospektywnym zbieraniem danych przeprowadzonym w Łotwie w latach 2007–2022 zidentyfikowano łącznie 4124 zakażenia wirusem KZM, z których aż 823 (20%) stanowiły zakażenia bez zajęcia OUN. Wyniki tego badania potwierdzają, że obciążenie zdrowia publicznego KZM w rzeczywistości jest większe niż szacowane na podstawie oficjalnych danych krajowych, a mimo braku objawów neurologicznych aż 92% pacjentów bez zajęcia OUN wymagało hospitalizacji. U wielu pacjentów utrzymywało się drżenie i ataksja, a znaczna liczba osób zgłaszała ból głowy, problemy z koncentracją i pamięcią, a także zaburzenia emocjonalne.26

Postępowanie lecznicze w Polsce jest zgodne z europejskimi standardami – ma charakter wyłącznie objawowy. Nie zaleca się rutynowego stosowania glikokortykosteroidów, choć w praktyce klinicznej nadal się je zaleca w ciężkich postaciach choroby, co odzwierciedla brak jednoznacznych wytycznych krajowych opartych na wysokiej jakości danych. Jak wspomnieli autorzy artykułu, nie ma swoistego leczenia przeciwwirusowego, dlatego istnieje pilna potrzeba badań klinicznych w tym obszarze.15

W Polsce na tle innych krajów endemicznych, takich jak Austria lub Szwajcaria, szczególnie widoczna jest mała wyszczepialność przeciwko KZM. Skuteczne i bezpieczne szczepionki są dostępne, ale brak refundacji lub innych mechanizmów finansowania publicznego oraz wciąż mała świadomość społeczna tej choroby sprawiają, że profilaktyka za pomocą szczepień nie jest odpowiednio realizowana. W kontekście zwiększania się liczby zachorowań i ekspansji obszarów endemicznych problem ten nabiera szczególnego znaczenia.15 Szczepienie przeciwko KZM zaleca się wszystkim osobom w wieku ≥12 miesięcy narażonym na ukłucia kleszczy w związku z wykonywaną pracą (np. osobom zatrudnionym przy eksploatacji lasu, stacjonującemu wojsku, funkcjonariuszom straży pożarnej i granicznej, rolnikom, młodzieży odbywającej staże i praktyki zawodowe w lesie) lub aktywnością rekreacyjną na świeżym powietrzu (np. biegaczom, spacerowiczom, grzybiarzom, właścicielom psów, myśliwym, rodzinom z małymi dziećmi, turystom, uczestnikom obozów i kolonii). Wskazuje na to wprost polski program szczepień ochronnych.27

Podsumowując, komentowany artykuł stanowi cenny punkt odniesienia również dla polskich realiów klinicznych i epidemiologicznych KZM. Dane europejskie potwierdzają, że zmiany w częstości występowania KZM i ekologii kleszczy dotyczą także Polski. Wymaga to wzmocnienia nadzoru epidemiologicznego, ujednolicenia zaleceń diagnostyczno-terapeutycznych oraz intensyfikacji działań profilaktycznych, w tym przede wszystkim promocji szczepień ochronnych. Postulaty te ujęto w rekomendacjach polskich ekspertów.15,25

Piśmiennictwo do komentarza:

1. Rosa R, Andreo V, Tagliapietra V, et al. Effect of climate and land use on the spatio-temporal variability of tick-borne bacteria in Europe. Int J Environ Res Public Health. 12 April 2018;15(4):732. doi: 10.3390/ijerph15040732
2. Randolph SE. Evidence that climate change has caused ‚emergence’ of tick-borne diseases in Europe? Int J Med Microbiol. 2004 Apr;293 Suppl 37:5-15. doi: 10.1016/s1433-1128(04)80004-4
3. Randolph SE; EDEN-TBD sub-project team. Human activities predominate in determining changing incidence of tick-borne encephalitis in Europe. Euro Surveill. 2010 Jul 8;15(27):24-31. doi: 10.2807/ese.15.27.19606-en
4. Barp N, Cappi C, Meschiari M, et al. First Human Case of Tick-Borne Encephalitis in Non-Endemic Region in Italy: A Case Report. Pathogens. 2022 Jul 29;11(8):854. doi: 10.3390/pathogens11080854
5. Roelandt S, Suin V, Riocreux F, al. Autochthonous Tick-Borne Encephalitis Virus-Seropositive Cattle in Belgium: A Risk-Based Targeted Serological Survey. Vector Borne Zoonotic Dis. 2014 Sep;14(9):640-7. doi: 10.1089/vbz.2014.1576
6. Weststrate AC, Knapen D, Laverman GD, et al. Increasing evidence of tick-borne encephalitis (TBE) virus transmission, the Netherlands, June 2016. Euro Surveill. 2017 Mar 16;22(11):30482. doi: 10.2807/1560–7917.ES.2017.22.11.30482
7. Springer A, Lindau A, Fachet-Lehmann K, et al. Tick hazard in a Central European country: Mapping Europe’s principal tick-borne disease vector across Germany. Ticks Tick Borne Dis. 2025 May;16(3):102485. doi: 10.1016/j.ttbdis.2025.102485
8. Kahl O, Gray JS. The biology of Ixodes ricinus with emphasis on its ecology. icks Tick Borne Dis. 2023 Mar;14(2):102114. doi: 10.1016/j.ttbdis.2022.102114
9. Kilpatrick AM, Randolph SE. Drivers, dynamics, and control of emerging vector-borne zoonotic diseases. Lancet. 2012 Dec 1;380(9857):1946-55. doi: 10.1016/S0140-6736(12)61151-9
10. Lundkvist A, Wallensten A, Vene S, Hjertqvist M. Tick-borne encephalitis increasing in Sweden, 2011. Euro Surveill. 2011 Sep 29;16(39):19981. doi: 10.2807/ese.16.39.19981-en
11. Stefanoff P, Zielicka-Hardy A, Hlebowicz M, et al. New endemic foci of tick-borne encephalitis (TBE) identified in districts where testing for TBE was not available before 2009 in Poland. Parasit Vectors. 2013 Jun 18;6:180. doi: 10.1186/1756-3305-6-180
12. Mohareb E, Christova I, Soliman A, et al. Tick-borne encephalitis in Bulgaria, 2009 to 2012. Euro Surveill. 2013 Nov 14;18(46):20635. doi: 10.2807/1560–7917.es2013.18.46.20635
13. Ruzek D, Avšič Županc T, Borde J, Chrdle A, Eyer L, Karganova G, et al. Tick-borne encephalitis in Europe and Russia: Review of pathogenesis, clinical features, therapy, and vaccines. Antiviral Res. 2019 Apr;164:23-51. doi: 10.1016/j.antiviral.2019.01.014
14. Zajkowska J, Waluk E, Świerzbińska R, et al. The impact of serological testing implementation on tick-borne encephalitis detection in Poland. PLoS One. 2025 May 16;20(5):e0323022. doi: 10.1371/journal.pone.0323022
15. Kuchar E, Augustynowicz E, Flisiak R, et al. Zmieniająca się epidemiologia kleszczowego zapalenia mózgu: wyzwania związane z nadzorem epidemiologicznym i zapobieganiem chorobie [The changing epidemiology of tick-borne encephalitis: epidemic surveillance and disease prevention challenges]. Med Pr. 2024 Dec 23;75(6):569-582. Polish. doi: 10.13075/mp.5893.01575
16. Paradowska-Stankiewicz I, Pancer K, Poznańska A, et al. Tick-borne encephalitis epidemiology and surveillance in Poland, and comparison with selected European countries before and during the COVID-19 pandemic, 2008 to 2020. Euro Surveill. 2023 May;28(18):2200452. doi: 10.2807/1560–7917.ES.2023.28.18.2200452
17. Velay A, Solis M, Kack-Kack W, et al. A new hot spot for tick-borne encephalitis (TBE): A marked increase of TBE cases in France in 2016. Ticks Tick Borne Dis. 2018 Jan;9(1):120- 125. doi: 10.1016/j.ttbdis.2017.09.015
18. Król N, Chitimia-Dobler L, Dobler G, et al. Identification of New Microfoci and Genetic Characterization of Tick-Borne Encephalitis Virus Isolates from Eastern Germany and Western Poland. Viruses. 2024 Apr 19;16(4):637. doi: 10.3390/v16040637
19. Ruzek D, Kaucka K. A brief tale of two pioneering moments: Europe’s first discovery of Tick-Borne Encephalitis (TBE) virus beyond the Soviet Union and the largest alimentary TBE outbreak in history. Ticks Tick Borne Dis. 2024 May;15(3):102314. doi: 10.1016/j.ttbdis.2024.102314
20. Brockmann S, Oehme R, Buckenmaier T, et al. A cluster of two human cases of tick-borne encephalitis (TBE) transmitted by unpasteurised goat milk and cheese in Germany, May 2016. Euro Surveill. 2018 Apr;23(15):17-00336. doi: 10.2807/1560-7917.ES.2018.23.15.17-00336
21. Król ME, Borawski B, Nowicka-Ciełuszecka A, Tarasiuk J, Zajkowska J. Outbreak of alimentary tick-borne encephalitis in Podlaskie voivodeship, Poland. Przegl Epidemiol. 2019;73(2):239-248. doi: 10.32394/pe.73.01
22. Kríz B, Benes C, Daniel M. Alimentary transmission of tick-borne encephalitis in the Czech Republic (1997–2008). Epidemiol Mikrobiol Imunol. 2009 Apr;58(2):98-103
23. Lotric-Furlan S, Avsic-Zupanc T, Strle F. An abortive form of tick-borne encephalitis (TBE) – a rare clinical manifestation of infection with TBE virus. Wien Klin Wochenschr. 2002 Jul 31;114(13-14):627-9
24. Kunze M, Banović P, Bogovič P, et al. Recommendations to Improve Tick-Borne Encephalitis Surveillance and Vaccine Uptake in Europe. Microorganisms. 2022 Jun 24;10(7):1283. doi: 10.3390/microorganisms10071283
25. Kuchar E, Zajkowska J, Flisiak R, et al. Epidemiologia, diagnostyka i profilaktyka kleszczowego zapalenia mózgu w Polsce i wybranych krajach europejskich – stanowisko polskiej grupy ekspertów [Epidemiology, diagnosis, and prevention of tick-borne encephalitis in Poland and selected European countries – a position statement of the Polish group of experts]. Med Pr. 2021 Apr 9;72(2):193-210. Polish. doi: 10.13075/mp.5893.01063
26. Freimane ZI, Karelis GI, Zolovs M, Zavadska DI. Tick-borne encephalitis infections without CNS involvement: An observational study in Latvia, 2007–2022. PLoS One. 2024 Jun 7;19(6):e0305120. doi: 10.1371/journal.pone.0305120
27. Komunikat Głównego Inspektora Sanitarnego z dnia 31 października 2025 r. w sprawie Programu Szczepień Ochronnych na rok 2026. DZ. URZ. Min. Zdr. 2025.85
Zobacz także
Konferencje MP
  • Jesień Pediatryczna 2026
    Kraków, 25–26 września
    • najnowsze wytyczne, algorytmy diagnostyczno-terapeutyczne, debaty
    • warsztaty (ćwiczenia na fantomach): m.in. resuscytacja, nakłucie lędźwiowe, otoskopia, USG płuc
    • aż 30 istotnych problemów pediatrycznych z rozwiązaniami
    • 6 sesji tematycznych, różnorodność zagadnień i form prezentacji
    • doświadczeni eksperci, doceniani wykładowcy
  • Rodzinna 2026
    Kraków, 27–28 listopada
    • współczesne wyzwania medycyny rodzinnej w praktyce
    • diagnostyka i decyzje terapeutyczne w podstawowej opiece zdrowotnej
    • choroby przewlekłe w POZ – aktualne standardy postępowania

Napisz do nas

Zadaj pytanie ekspertowi, przyślij ciekawy przypadek, zgłoś absurd, zaproponuj temat dziennikarzom.
Pomóż redagować portal.
Pomóż usprawnić system ochrony zdrowia.