Tłumaczyła lek. Iwona Rywczak
Komentarz dr hab. n. med. Iwona Sadowska-Krawczenko, prof. UMK, Katedra Neonatologii Collegium Medicum w Bydgoszczy Uniwersytetu im. Mikołaja Kopernika w Toruniu
Skróty: BCR – receptor limfocytów B, FcRn – noworodkowy receptor Fc, IIV – inaktywowana szczepionka przeciwko grypie, MMR – skojarzona szczepionka przeciwko odrze, śwince i różyczce, NEC – martwicze zapalenie jelit, PT – toksyna krztuścowa, PRN – pertaktyna, Tdap – skojarzona szczepionka zawierająca toksoid tężcowy, zmniejszoną dawkę toksoidu błoniczego i bezkomórkowych antygenów krztuśca
Translated from Albrecht M. and Arck P.C. (2020), Vertically transferred immunity in neonates: mothers, mechanisms and mediators. Frontiers in Immunology, 11: 555. doi: 10.3389/fimmu.2020.00555. Copyright © 2020 Albrecht and Arck. This is an open-access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License (CC BY).
Streszczenie
Na przestrzeni ostatnich lat zwiększyła się liczba ognisk epidemicznych chorób, którym można zapobiegać poprzez szczepienia. Poza osobami w starszym wieku i z upośledzeniem odporności najbardziej narażone na infekcje są noworodki i młodsze niemowlęta, ponieważ ich układ immunologiczny jest jeszcze niedojrzały. Tę zwiększoną podatność na zakażenia w okresie niemowlęcym można zmniejszyć dzięki przezłożyskowemu transferowi do płodu przeciwciał swoistych dla chorobotwórczych drobnoustrojów oraz innych mediatorów układu odpornościowego, a następnie, już po urodzeniu się dziecka, dzięki odporności uzyskiwanej poprzez karmienie mlekiem matki. Ponieważ ta odporność bierna, wynikająca w dużym stopniu z przeniesienia przeciwciał, może zapobiegać wystąpieniu infekcji u noworodków, odporność noworodka jest silnie uzależniona od stężenia swoistych przeciwciał u matki w okresie ciąży. Jeżeli stężenie jest małe lub ulega szybkiemu zmniejszeniu po porodzie, ochrona przekazana dziecku może nie być wystarczająca, aby zapobiec zachorowaniu. Pojawiły się również teorie, że matka może przekazać noworodkowi odporność czynną na skutek transferu przezłożyskowego swoistych limfocytów T. Obiecującą strategią wzmacniającą i wydłużającą odporność noworodka jest szczepienie matek przed ciążą lub w trakcie ciąży w celu zwiększenia stężenia przeciwciał i dostępności swoistych limfocytów T. W celu potwierdzenie tej koncepcji przeprowadzono wiele badań klinicznych nad szczepieniami przed zajściem w ciążę i w trakcie ciąży. W artykule zwrócono uwagę na obserwacje pochodzące z nowszych badań, w których oceniono wpływ szczepienia kobiet w ciąży przeciwko chorobom stanowiącym potencjalne zagrożenie dla noworodków (np. odrze, krztuścowi, różyczce i grypie typu A). Opisano mechanizmy uczestniczące w przekazywaniu swoistych przeciwciał matczynych. Omówiono również konsekwencje dla zdrowia dzieci i długotrwałej odporności w zależności od schematów szczepień wykonywanych w czasie ciąży.Odporność w pierwszych miesiącach życia i okres zwiększonego ryzyka infekcji
Po porodzie, a także w pierwszych miesiącach życia,
układ odpornościowy dziecka nie jest w pełni
dojrzały,1,2 dlatego noworodki i niemowlęta są
szczególnie narażone na choroby zakaźne, takie
jak odra, krztusiec, różyczka i grypa. Choroby te
mogą mieć u tych dzieci ciężki przebieg, prowadzący
nawet do zgonu.3-5 Dostępność bezpiecznych i immunogennych szczepionek przeciwko chorobom
zakaźnym, na przykład skojarzonej szczepionki
przeciwko odrze, śwince i różyczce (MMR),
nie zmniejsza tego zagrożenia dla noworodka, ponieważ
MMR ze względu na zawartość żywych
wirusów nie jest zalecana u dzieci przed ukończeniem
12. miesiąca życia. Podobnie jest ze szczepionką
przeciwko błonicy, tężcowi i krztuścowi
oraz inaktywowaną szczepionką przeciwko grypie
(IIV), których nie zaleca się u dzieci w wieku
odpowiednio <2 i <6 miesięcy.6,7 Te ograniczenia w szczepieniach stanowią słaby punkt w odporności
noworodka na te drobnoustroje do momentu,
gdy dziecko osiągnie odpowiedni wiek do szczepienia
przeciwko wymienionym chorobom.8
Ten brak odporności wyrównuje się, przynajmniej
częściowo, dzięki aktywnemu przezłożyskowemu
transferowi swoistych przeciwciał pochodzących od matki. Matka przekazuje w ten sposób
noworodkowi odporność bierną, zapewniając
dziecku ochronę przed chorobami zakaźnymi.1,9
Ilość przekazanych przeciwciał jest osobniczo
zmienna i zależy głównie od ich stężenia u matki.10,11 Opierając się na tym zjawisku naturalnej
odporności zależnej od matki, prowadzi się szerokie
dyskusje na temat strategii szczepień kobiet w ciąży. Takie postępowanie mogłoby zwiększyć
stężenie przeciwciał matczynych i co za tym idzie –
ilość przeciwciał przekazywanych przez łożysko,
czego efektem byłoby zwiększenie odporności biernej u noworodka.12
W związku z pojawianiem się w ostatnich latach
ognisk epidemicznych chorób, którym można
zapobiegać poprzez szczepienia (np. odry), nawet w krajach o dużych wskaźnikach wszczepialności,
temat szczepień przyciąga uwagę środowiska medycznego i społeczeństwa. W 2018 roku na świecie z powodu odry zmarło >140 000 osób, głównie
dzieci do 5. roku życia.13 Wzmacnianie odporności
noworodków poprzez szczepienie matek może być
skuteczną i efektywną kosztowo strategią zmniejszającą
ryzyko powikłań i zgonu dzieci z powodu
chorób zakaźnych.14-16 W artykule omówiono
najnowsze badania na temat szczepień matek
przeciwko typowym chorobom wieku dziecięcego,
takim jak krztusiec, grypa, odra i różyczka.
Opisano szlaki zaangażowane w przezłożyskowy
transfer przeciwciał matczynych oraz mechanizmy
zwiększania odporności noworodków niezależne
od przeciwciał matczynych (ryc. 1.).

Ryc. 1. Odporność matczyna, szczepienia zalecane przed ciążą, w czasie ciąży i po porodzie oraz ich wpływ na zdrowie matki i dziecka.
Wyniki badań dotyczących szczepienia Tdap w czasie ciąży
Autorzy kilku niedawno opublikowanych badań wykazali, że szczepienie skojarzoną szczepionką zawierającą toksoid tężcowy, zmniejszoną dawkę toksoidu błoniczego i bezkomórkowych antygenów krztuśca (Tdap) można zalecać w czasie ciąży. Badania te przeprowadzono w dużych grupach i w różnych krajach, potwierdzając bezpieczeństwo i immunogenność szczepionek u matek i ich dzieci (tab.). Zgodnie z raportami Światowej Organizacji Zdrowia (WHO), dzięki wdrożeniu zalecanych strategii eliminacyjnych, w tym szczepień kobiet ciężarnych, w latach 1988–2015 liczba zgonów z powodu tężca noworodkowego zmniejszyła się o 96%.17 Zmniejszyło się też obciążenie związane z zachorowaniami na błonicę,18 jednak nie udało się tego osiągnąć w odniesieniu do eliminacji krztuśca. W ostatnich latach ogniska epidemiczne krztuśca, narażające młodsze niemowlęta na szczególnie duże ryzyko choroby o ciężkim przebiegu, obserwowano na całym świecie, dlatego w artykule skupiono się przede wszystkim na badaniach oceniających efekty szczepień ciężarnych przeciwko tej chorobie.
Tabela. Przegląd badań dotyczących oceny bezpieczeństwa, skuteczności rzeczywistej i innych zmiennych szczepionek Tdap, IIV i MMR podanych w okresie rozrodczym, w czasie ciąży lub w wieku niemowlęcym | |||
---|---|---|---|
Cel badania | Metodyka | Liczba uczestników | Pozycja piśmiennictwa |
drobnoustroje: C. tetani, C. diphtheriae, B. pertussis | |||
ocena odporności na choroby, którym można zapobiegać poprzez szczepienia | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 194 | 1 |
bezpieczeństwo i immunogenność Tdap podanej w czasie ciąży, interferencja matczynych przeciwciał | badanie z randomizacją, metoda podwójnie ślepej próby | 171 | 19 |
efekty szczepienia 2 dawkami szczepionki przeciwko krztuścowi przed ukończeniem 2. mż. | badanie z randomizacją, metoda otwartej próby | 76 | 22 |
ocena stężenia przeciwciał przeciwko B. pertussis w III trymestrze ciąży i u noworodków | badanie obserwacyjne, przekrojowe | 111 | 23 |
wpływ Tdap podanej w czasie ciąży na zdrowie zaszczepionych kobiet | badanie obserwacyjne z retrospektywnym zbieraniem danych | 68 550 | 24 |
skuteczność rzeczywista Tdap podanej w czasie ciąży | badanie kliniczno-kontrolne z dopasowaniem pacjentów kontrolnych do przypadków | 234 | 28 |
skuteczność rzeczywista w zapobieganiu krztuścowi u noworodków badanie kliniczno-kontrolne z dopasowaniem pacjentów kontrolnych do przypadków | 88 | 29 | |
analiza porównawcza czasu wykonania szczepienia Tdap u ciężarnej i stężenia przeciwciał u noworodka | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 81 | 30 |
ustalenie, w którym tygodniu III trymestru ciąży najlepiej wykonać szczepienie Tdap | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 154 | 31 |
analiza porównawcza szczepienia Tdap w II i III trymestrze ciąży | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 335 | 32 |
efekty szczepienia przypominającego Tdap w okresie między ciążami | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 144 | 72 |
analiza porównawcza stężenia przeciwciał i innych białek u matki i we krwi pępowinowej w fizjologicznym terminie porodu | badanie obserwacyjne | 16 | 73 |
ocena przeciwciał neutralizujących u niemowląt po szczepieniu przeciwko błonicy | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 44 | 94 |
wpływ szczepienia matki Tdap i IIV na odpowiedź humoralną u niemowląt | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 369 | 95 |
wpływ szczepienia przypominającego Tdap w czasie ciąży na stężenie matczynych przeciwciał oraz odpowiedź u niemowląt | badanie kohortowe z prospektywnym zbieraniem danych | 99 | 96 |
bezpieczeństwo i immunogenność Tdap podanej w czasie ciąży oraz jej wpływ na odpowiedź immunologiczną u niemowląt | badanie z randomizacją, metoda podwójnie ślepej próby | 80 | 97 |
wirus grypy | |||
ocena bezpieczeństwa i immunogenności TIV przeciwko grypie sezonowej podanej w czasie ciąży | badanie z randomizacją, metoda podwójnie ślepej próby | 100 | 40 |
ocena ryzyka wad rozwojowych u noworodków po ekspozycji na IIV w I trymestrze ciąży | badanie obserwacyjne | 425 944 | 41 |
utrzymywanie się swoistych przeciwciał wykrywanych w teście hamowania hemaglutynacji i skuteczność rzeczywista TIV w kolejnych sezonach epidemicznych grypy u zaszczepionych kobiet | badanie z randomizacją, metoda podwójnie ślepej próby | 479 | 43 |
czas utrzymywania się ochrony niemowlęcia po szczepieniu matki IIV | badanie w ramach badania klinicznego z randomizacją, metoda podwójnie ślepej próby | 322 | 44 |
skuteczność kliniczna szczepienia IIV w czasie ciąży, bezpieczeństwo i immunogenność szczepionek przeciwko pneumokokom | badanie z randomizacją, metoda podwójnie ślepej próby | 340 | 45 |
ocena ryzyka hospitalizacji niemowląt z powodu infekcji dolnych dróg oddechowych po szczepieniu matek IIV | analiza wtórna badania z randomizacją | 52 | 46 |
wpływ szczepienia IIV w czasie ciąży na ryzyko zachorowania na grypę u dzieci w wieku <6. mż. | badanie kohortowe z prospektywnym zbieraniem danych | 1169 | 47 |
wpływ szczepienia IIV w czasie ciąży na częstość zakażeń B. pertussis u matek | retrospektywna analiza próbek pobranych w ramach badania klinicznego z randomizacją | 3125 | 48 |
wpływ suplementacji wit. A na odpowiedź immunologiczną na IIV podaną w czasie ciąży | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 112 | 70 |
ocena uczulenia na antygeny IIV in utero | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 126 | 74 |
wpływ szczepienia matek przeciwko grypie na stężenie swoistych przeciwciał IgA w mleku matki | badanie prospektywne z grupą kontrolną, metoda ślepej próby | 340 | 80 |
wpływ reakcji krzyżowych odporności komórkowej na objawowe zakażenia wirusem grypy u osób nieposiadających przeciwciał | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 342 | 90 |
wirus odry, świnki i różyczki | |||
repertuar matczynych przeciwciał przeciwwirusowych u noworodka tuż po porodzie | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 78 | 10 |
ocena bezpieczeństwa MMR u dorosłych | badanie obserwacyjne z retrospektywnym zbieraniem danych | 3175 | 51 |
ocena zahamowania limfocytów B przy immunosupresji związanej z zakażeniem wirusem odry | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 29 | 54 |
ocena odległego wpływu zakażenia wirusem odry na układ immunologiczny | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 196 | 55 |
związek pomiędzy wiekiem matki i historią przebytych szczepień a stężeniem matczynych przeciwciał we krwi pępowinowej | badanie obserwacyjne | 206 | 57 |
transfer przeciwciał matek zaszczepionych lub po przebyciu choroby u dzieci urodzonych przedwcześnie i w fizjologicznym terminie | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 195 | 58 |
ocena ilościowa przeciwciał przeciwko wirusom odry, świnki, różyczki oraz ospy wietrznej i półpaśca u matek i niemowląt | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 138 | 59 |
czas utrzymywania się matczynych przeciwciał przeciwko odrze u niemowląt | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 207 | 60 |
odsetek seroujemnych niemowląt w wieku <6 mies. i obecność swoistych przeciwciał po szczepieniu przeciwko odrze | badanie przekrojowe | 203 | 61 |
zakażenie płodu w grupie ciężarnych zakażonych wirusem różyczki | badanie obserwacyjne z prospektywnym zbieraniem danych | 40 | 62 |
wykrywanie przeciwciał IgM przeciwko różyczce u ciężarnych z reinfekcją o subklinicznym przebiegu | opis przypadku | 8 | 63 |
kryteria reinfekcji wirusem różyczki | opis przypadku | 5 | 64 |
zakażenie płodu wirusem różyczki w wyniku ponownego zakażenia matki w czasie ciąży | opis przypadku | 1 | 65 |
badanie seroepidemiologiczne oceniające występowanie przeciwciał przeciwko odrze, śwince i różyczce u ciężarnych i noworodków | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 353 | 71 |
ocena przezłożyskowego transportu kompleksów immunologicznych zawierających przeciwciała IgG | badanie z prospektywnym zbieraniem danych | 152 | 75 |
immunogenność szczepionki przeciwko odrze u niemowląt w wieku <12. mż. | badanie kohortowe | 72 | 92 |
badania nad odpornością związaną z karmieniem naturalnym | |||
ocena mikrobioty jelit związanej z IgA zawartymi w mleku matki | badanie obserwacyjne | 69 | 81 |
wpływ infekcji w czasie ciąży na stężenie IgA w mleku matki | badanie przekrojowe | 900 | 82 |
IIV – inaktywowana szczepionka przeciwko grypie, MMR – skojarzona szczepionka przeciwko odrze, śwince i różyczce, Tdap – skojarzona szczepionka zawierająca toksoid tężcowy, zmniejszoną dawkę toksoidu błoniczego i bezkomórkowych antygenów krztuśca, TIV – 3-walentna inaktywowana szczepionka przeciwko grypie |
W jednym z niedawno opublikowanych badań
autorzy ocenili u matek i ich dzieci bezpieczeństwo i immunogenność Tdap podanej w czasie ciąży, a także możliwy wpływ matczynych przeciwciał
na odpowiedź na szczepienia wykonywane w okresie
niemowlęcym.19 Poza łagodnymi i samoistnie
ustępującymi reakcjami w miejscu wkłucia nie
odnotowano żadnych zdarzeń niepożądanych
po podaniu Tdap u matek i ich dzieci. W porównaniu z grupą placebo, u matek zaszczepionych
Tdap stwierdzono znamiennie większe stężenie
przeciwciał przeciwko toksynie krztuścowej (PT),
które zapewniają ochronę głównie przed objawowym
zakażeniem Bordetella pertussis,20 oraz
przeciwko pertaktynie (PRN), których ochronna
rola polega na opsonizacji i ułatwieniu fagocytozy
B. pertussis.21 Zgodnie z powyższymi wynikami,
stężenie przeciwciał przeciwko PT i PRN oznaczone
tuż po urodzeniu było znamiennie większe u dzieci zaszczepionych kobiet. Niezależnie
od szczepienia w okresie prenatalnym, stężenie
przeciwciał oznaczone we krwi pępowinowej było
większe niż stężenie przeciwciał oznaczone u matki w czasie porodu, co wskazuje na aktywny transport
przeciwciał przez łożysko. Jednak stężenie
przeciwciał anty-PT i anty-PRN zmniejszało się
szybko w ciągu pierwszych 2 miesięcy życia.
Badacze zwrócili również uwagę na różnicę w produkcji przeciwciał anty-PRN i anty-PT po podaniu
zgodnie z kalendarzem szczepień w wieku 2 i 4 miesięcy skojarzonej szczepionki przeciwko
tężcowi, błonicy, krztuścowi, polio i Hib.19 U dzieci
matek, które otrzymały placebo, odnotowano
większe narastanie stężenia przeciwciał anty-PT
niż u dzieci matek zaszczepionych Tdap. Wskazuje
to, że matczyne przeciwciała oddziałują
na odpowiedź humoralną dziecka na szczepienie.
Niespodziewanie zaobserwowano również, że w przeciwieństwie do odpowiedzi na PT, produkcja
przeciwciał anty-PRN nie zwiększyła się, niezależnie
od szczepienia matki Tdap. Odmienne
wyniki uzyskano w badaniu oceniającym odpowiedź
na szczepienie przeciwko błonicy, tężcowi i krztuścowi we wczesnym okresie życia, w którym
stwierdzono dobrą produkcję przeciwciał zarówno
anty-PT, jak i anty-PRN.22 Z treści obu artykułów
nie można wywnioskować, z czego wynikają rozbieżności w odpowiedzi na szczepienie. Przyczyna
może leżeć w różnicach w wielkości kohort, procedurze
przygotowania próbek lub różnych zestawach testów ELISA wykorzystanych do oznaczenia
stężenia przeciwciał.
W innym badaniu oceniającym wpływ szczepienia
kobiet w drugim trymestrze ciąży szczepionką
Tdap23 obecność przeciwciał anty-PT w klasie
IgG stwierdzono u 92% dzieci urodzonych przez
zaszczepione kobiety i u żadnego dziecka kobiet
nieszczepionych. Chociaż badanie to ma pewne
ograniczenia (np. brak danych o wstępnym stężeniu
anty-PT, wykorzystanie testów ELISA
umożliwiających wyłącznie stwierdzenie obecności
przeciwciał lub ich brak, a nie ocenę stężenia),
wskazuje, że szczepienie kobiet w II trymestrze
ciąży szczepionką Tdap znamiennie zwiększa odsetek
seropozytywnych noworodków.
Przedmiotem badań była nie tylko odpowiedź
immunologiczna na Tdap w czasie ciąży u matki i dziecka, ale również jej bezpieczeństwo. Korzystając z różnych krajowych baz danych (badanie
przeprowadzono w Nowej Zelandii – przyp. red.),
Griffin i wsp.24 zidentyfikowali dużą kohortę
kobiet uprawnionych do finansowanych przez
państwo szczepień Tdap między 28. a 38. tygodniem
ciąży. Głównym punktem końcowym była
hospitalizacja z powodu ciężkich powikłań ciąży, a dodatkowym punktem końcowym hospitalizacja z powodu lżejszych powikłań. Kluczowym wnioskiem,
jaki wyciągnięto z tego badania, był brak
zwiększonego ryzyka wystąpienia tych zdarzeń
po podaniu Tdap w czasie ciąży. Co intrygujące,
autorzy badania zaobserwowali, że szczepienie
Tdap w czasie ciąży znamiennie zmniejszyło
ryzyko hospitalizacji z powodu ciężkiego stanu
przedrzucawkowego oraz krwawienia po porodzie i porodu przedwczesnego. Jednak spostrzeżenia te
mogą wynikać z błędu systematycznego, ponieważ
grupa szczepiona i nieszczepiona różniły się pod
względem czynników demograficznych. W grupie
zaszczepionej było więcej kobiet pochodzenia europejskiego,
będących pod opieką ginekologa oraz o wyższych dochodach. Ponieważ częstość powikłań
ciąży oraz umieralność matek i niemowląt
raczej wiąże się z niższym statusem ekonomiczno-społecznym
oraz pochodzeniem innym niż kaukaskie,25-27 można założyć, że na większą częstość
zdarzeń stanowiących główny i dodatkowy punkt
końcowy wpływały czynniki zakłócające.
Warto zauważyć, że w latach 2011–2013 w Nowej
Zelandii odnotowano dużą epidemię krztuśca.
Mimo to szczepieniu poddało się tylko 11,9%
uprawnionych do tego kobiet uwzględnionych w badaniu Griffin i wsp. Obserwacje te wskazują
na pilną potrzebę dalszej edukacji społeczeństwa w zakresie skuteczności szczepienia przeciwko
krztuścowi.
Coraz więcej danych potwierdza bezpieczeństwo i immunogenność Tdap. Saul i wsp. ocenili
skuteczność rzeczywistą Tdap podanej matkom w odniesieniu do hospitalizacji niemowląt z powodu
krztuśca.28 Skuteczność rzeczywista Tdap w zapobieganiu zachorowaniom na krztusiec u niemowląt
przed ukończeniem 6. miesiąca życia wyniosła
39%, a u dzieci do 3. miesiąca życia 69%.
Ogółem skuteczność rzeczywista Tdap w zapobieganiu
zachorowaniom na krztusiec o ciężkim
przebiegu wyniosła 94%. Wynik te jasno wskazują,
że szczepienie matek Tdap głównie zapobiega
ciężkim przypadkom krztuśca, czyli raczej łagodzi
przebieg choroby niż przed nią chroni. Dodatkowo
autorzy stwierdzili, że przed zakażeniem pałeczką
krztuśca może także chronić karmienie piersią.
Takie same obserwacje poczyniono w innym, bardzo
podobnym badaniu przeprowadzonym w tym
samym roku.29 Jego autorzy stwierdzili, że skuteczność
rzeczywista Tdap podanej w czasie ciąży w zapobieganiu krztuścowi potwierdzonemu
laboratoryjnie u dzieci do 3. miesiąca życia wyniosła
90,9%. W obliczeniach tych uwzględniono
jednak małą kohortę, a za jedyny dodatkowy czynnik
wpływający znamiennie na ochronę niemowląt
przed krztuścem uznano karmienie piersią.
Ten efekt można obserwować nie tylko u kobiet
zaszczepionych w czasie ciąży, u których matczyne
IgA przenikają do mleka, ale również u kobiet,
które nie były szczepione lub nie miały kontaktu z krztuścem w ciągu ostatnich 10 lat. Autorzy
badania sugerują, że ochronne działanie mleka
może się wiązać z innymi, bliżej nieokreślonymi
składnikami mleka kobiecego.
Zalecenia dotyczące czasu wykonania szczepienia
są nadal różne w poszczególnych krajach.
Brytyjski National Health Service (NHS) zaleca
podanie Tdap między 16. a 32. tygodniem ciąży,30 a amerykański Advisory Committee on Immunization
Practices (ACIP) proponuje późniejszy termin
– między 27. a 36. tygodniem ciąży.6 W 1 badaniu
większe stężenie swoistych dla krztuśca
przeciwciał w klasie IgG we krwi pępowinowej
obserwowano u kobiet zaszczepionych w okresie
27.–30. tygodnia ciąży niż w przypadku podania
Tdap w 31. tygodniu lub później.31 Na podstawie
wyników innego badaniu zasugerowano, że
optymalny czas na podanie Tdap przypada między
28. a 32. tygodniem ciąży, ponieważ stężenie
swoistych przeciwciał we krwi pępowinowej
po szczepieniu wykonanym w tym okresie było
większe niż w przypadku podania szczepionki w późniejszych tygodniach ciąży.32 Odwrotne wyniki
uzyskano w innym badaniu z większą liczbą
uczestników. Stwierdzono, że szczepienie matek
Tdap między 13. a 25. tygodniem ciąży skutkowało
większym stężeniem przeciwciał przeciwkrztuścowych
we krwi pępowinowej niż szczepienie
>26. tygodnia ciąży.33 Większy odstęp między
szczepieniem a urodzeniem dziecka pozwala wydłużyć
okno transferu przeciwciał, co może wyjaśniać
obserwowane większe stężenie przeciwciał
we krwi pępowinowej. Przesunięcie zalecanego
szczepienia na wcześniejszy okres ciąży może być
więc korzystne nie tylko dla noworodków urodzonych
przedwcześnie.33
Podsumowując, szczepienie Tdap należy zalecać
każdej kobiecie w czasie każdej ciąży, niezależnie
od wcześniej przebytych szczepień przeciwko
krztuścowi. Takie postępowanie pozwala uzyskać
duże stężenie matczynych przeciwciał pod koniec
ciąży, które potem będą mogły być przekazane
przez łożysko w większej ilości. Szczepienie w II
lub III trymestrze ciąży jest bezpieczne i skuteczne,
jednak najlepszą strategią zapewniającą duże
stężenie przeciwciał przeciwkrztuścowych u noworodka
wydaje się szczepienie między 13. a 25. tygodniem
ciąży. Poza szczepieniem matki, bierną
ochronę noworodka poprzez zmniejszenie ekspozycji
można również uzyskać dzięki tzw. strategii
kokonu, czyli zaszczepieniu członków rodziny i opiekunów noworodka.34,35 Wszystkie opisane
metody postępowania pozwalają zmniejszyć ryzyko
zachorowania na krztusiec w pierwszych miesiącach
życia aż do czasu, gdy dziecko samo wytworzy
swoistą odporność humoralną i komórkową.
Wyniki badań dotyczących szczepienia ciężarnych przeciwko grypie
Poza Tdap, jedynym szczepieniem zalecanym w czasie ciąży jest szczepienie przeciwko grypie
preparatem inaktywowanym. Kobiety w ciąży
należą do grupy dużego ryzyka ciężkiego przebiegu i powikłań grypy z uwagi na upośledzoną
odpowiedź przeciwwirusową, co ma wieloczynnikowe
uwarunkowanie. Jak wykazano w badaniach
na modelach zwierzęcych, te szczególne, mniej restrykcyjne
warunki (wynikające z niedostatecznej
odpowiedzi immunologicznej na zakażenie wirusowe
– przyp. red.) mogą sprzyjać pojawianiu się
zmutowanych wariantów wirusa grypy i zwiększać
patogenność wirusa.36 Niemiecki Instytut
Roberta Kocha, naukowa instytucja rządowa odpowiedzialna
za takie dziedziny zdrowia publicznego,
jak nadzór epidemiologiczny i zapobieganie
chorobom zakaźnym, zaleca szczepienie wszystkich
kobiet w II i III trymestrze ciąży. U kobiet z grupy ryzyka powikłań oraz z chorobami przewlekłymi szczepienie zaleca się nawet w I trymestrze.37 Podobne zalecenie wydał ACIP w Stanach
Zjednoczonych,38 gdzie szczepienie przeciwko grypie
zaleca się w dowolnym momencie prawidłowo
przebiegającej ciąży.
Te zalecenia opracowano na podstawie licznych
badań przeprowadzonych na całym świecie, oceniających
bezpieczeństwo, immunogenność i skuteczność
szczepionek przeciwko grypie w czasie
ciąży. Badania te jednoznacznie wskazują na korzyści
związane z ochroną matek i ich dzieci przed
zachorowaniem na grypę, co obszernie omówiono w innych artykułach.14,15,39
Co więcej, w niezależnych badaniach (tab.)
oceniono wpływ szczepienia ciężarnych przeciwko
grypie na przebieg ciąży, potwierdzając, że nie
zmienia ono ryzyka wystąpienia strukturalnych
wad u płodu lub powikłań ciąży.40,41 Zaobserwowano
natomiast, że dzieci urodzone przez zaszczepione
kobiety były obarczone mniejszym ryzykiem
masy urodzeniowej zbyt małej do wieku ciążowego
(SGA), a ich masa urodzeniowa była ogólnie
większa.42 W badaniach dotyczących immunogenności,
wykorzystujących testy hamowania hemaglutynacji
(HAI), stwierdzono, że odpowiedź
humoralna na IIV była podobna u ciężarnych i kobiet niebędących w ciąży.40 Zasygnalizowano
również odwrotną korelację między starszym wiekiem
matki a wskaźnikami serokonwersji i seroprotekcji,
jednak nie przedstawiono danych potwierdzających
tę obserwację. W innym badaniu43
opisano z kolei, że miana przeciwciał w teście HAI
mogły się utrzymywać na wyższym poziomie przez
rok po szczepieniu, szczególnie u kobiet w wieku
<25 lat. Może to potwierdzać związek między wiekiem
matki a immunogennością IIV.
Poza odpowiedzią matek na szczepienie przeciwko
grypie w czasie ciąży, w wielu badaniach
oceniono również wpływ szczepienia na ich dzieci.
Zaobserwowano mniejsze wskaźniki hospitalizacji i łagodniejszy przebieg choroby u dzieci do 6. miesiąca
życia, związane nie tylko z zakażeniem wirusem
grypy,44,45 ale także z zapaleniem infekcyjnym
dolnych dróg oddechowych niezależnie
od przyczyny, wywołanym m.in. przez B. pertussis,
wirusy syncytium nabłonka oddechowego (RSV) i rynowirusy.42,46,47 Ten szeroki zakres ochrony
przed infekcjami dróg oddechowych tłumaczono
zwiększoną podatnością na drobnoustroje atakujące
drogi oddechowe po zakażeniu wirusem grypy,
przed którym w większym stopniu chroni dziecko
odporność nabyta biernie od matki.46,48 Istnieje
jednak pilna potrzeba przeprowadzenia większych
badań, które potwierdzą te przypuszczenia. Korzystne
wyniki tych badań pozwoliłyby zwiększyć
wyszczepialność kobiet ciężarnych przeciwko grypie,
która jest na zaskakująco niskim poziomie.49
Szczepienia przeciwwskazane w czasie ciąży
W przeciwieństwie do szczepienia przeciwko tężcowi,
błonicy, krztuścowi oraz przeciwko grypie,
które można zalecać w czasie ciąży, „żywe” atenuowane
szczepionki, takie jak MMR, są przeciwwskazane u kobiet w ciąży z uwagi na teoretyczne
ryzyko przezłożyskowej transmisji wirusa i zakażenia
płodu.50 Jednak obserwacje związane z podaniem MMR w I trymestrze ciąży kobietom,
które nie wiedziały, że są w ciąży, wskazują, że
ryzyko powikłań, takich jak samoistne poronienie,
wodogłowie, krwawienie z dróg rodnych, poród
przedwczesny, nie jest większe niż w ogólnej
populacji. Nie odnotowano również przypadków
zakażenia płodu.51
W związku z nasilającym się na całym świecie
zjawiskiem niechęci wobec szczepień, 1 z 10 zagrożeń
zdrowotnych (wg WHO – przyp. red.),52 obserwuje
się szybkie rozprzestrzenianie się zachorowań
na odrę, co stwarza duże niebezpieczeństwo
dla zdrowia dzieci. Poza typowymi powikłaniami
odry u dzieci, takim jak biegunka, zapalenie
ucha środkowego i zapalenie płuc,53 niedawno
opisano zjawisko utraty humoralnej pamięci
immunologicznej wytworzonej po infekcji różnymi
drobnoustrojami (p. także „Amnezja immunologiczna”, czyli jak przechorowanie odry wpływa na układ odpornościowy –
przyp. red.).54,55 Ta „amnezja immunologiczna”
wynika z niepełnej rekonstytucji puli naiwnych
limfocytów B oraz utraty wcześniej powstałych
limfocytów B pamięci.54 Zatem po przebyciu odry
znacznie zwiększa się ryzyko zakażeń, co mocno
podkreśla znaczenie szczepień nie tylko dzieci,
ale również kobiet planujących ciążę. To pozwoli
zlikwidować słaby punkt, jakim jest podatność
na odrę przed wykonaniem zalecanego szczepienia >1. roku życia, oraz spełnić kryteria światowej
eliminacji odry.
W Niemczech MMR zaleca się tylko tym dorosłym,
którzy nie otrzymali szczepienia w pełnym
schemacie lub historia ich szczepień jest nieznana.37 Ponieważ obecnie kobiety rodzą swoje
pierwsze dziecko około 10 lat później niż miało to
miejsce 50 lat temu,56 wydłużył się także odstęp
czasu między wykonaniem szczepień typowych dla
wieku dziecięcego a początkiem ciąży. Do czasu
zajścia w ciążę mogło się zatem też zmniejszyć
stężenie przeciwciał. Zaobserwowano, że szczepienie
MMR wykonane w niewielkim odstępie
od początku ciąży wiąże się z większym stężeniem
matczynych przeciwciał u dziecka, niezależnie
od całkowitej liczby dawek, które podano
matce.57 W populacjach, w których patogeny, takie
jak wirus odry, nadal krążą, czyli często dochodzi
do zachorowań i wzmocnienia odporności poprzez
ekspozycję na dzikiego wirusa, obserwuje się
większe stężenie przeciwciał niż u osób zaszczepionych.57 I odwrotnie, w krajach o dużych wskaźnikach
wyszczepialności, w których wirus rzadko
krąży w populacji, stężenie swoistych przeciwciał u matek i ich dzieci jest raczej mniejsze z uwagi
na szybsze zanikanie przeciwciał poszczepiennych i brak naturalnego „odświeżenia” odporności w wyniku kontaktu z wirusem.58-60 Gonçalves i wsp. ocenili ilościowo to zjawisko, oznaczając stężenie
przeciwciał IgG przeciwko odrze we krwi pępowinowej.
Autorzy stwierdzili, że u dzieci kobiet
nieszczepionych MMR, z odpornością najprawdopodobniej
nabytą poprzez naturalne zakażenie,
stężenie wyniosło 1849 mIU/ml, a u dzieci matek
zaszczepionych MMR tylko 987 mIU/ml.57 Sugerowano,
że odpowiedź immunologiczna na odrę
może się różnić w zależności od tego, czy generuje
ją zakażenie dzikim wirusem czy szczepienie, ponieważ
mogą powstawać różne podklasy przeciwciał, a dzieci zaszczepionych kobiet szybciej tracą
nabytą biernie odporność niż dzieci kobiet, które
chorowały na odrę.61
W badaniach oceniających wpływ reinfekcji
ciężarnej wirusem różyczki na noworodka62-64
wykazano, że do ponownego zakażenia może
dojść zarówno u kobiet z naturalnie nabytą odpornością,
jak i szczepionych w dzieciństwie.
Warto zauważyć, że ryzyko ponownego zakażenia u szczepionych kobiet było większe, co może
wynikać z różnic w odpowiedzi immunologicznej
na szczepienie i zakażenie dzikim wirusem. Reinfekcja
ma na ogół subkliniczny przebieg, lecz może
się wiązać z ciężkimi powikłaniami, na przykład
zespołem różyczki wrodzonej, chociaż jak dotąd
opisano tylko 1 taki przypadek.65 Kobietom planujących
ciążę można zatem zalecić dawkę przypominającą
MMR, aby uniknąć ciężkiej choroby u dziecka w razie ekspozycji na wirusy odry lub
różyczki w okresie prenatalnym i pierwszych miesiącach
życia.
Mechanizmy przekazywania odporności noworodkowi
Przezłożyskowy transport matczynych przeciwciał
Liczne badania pokazują, że matczyne przeciwciała
swoiste dla drobnoustrojów chorobotwórczych
mogą być przekazane przez łożysko do płodu, co
zapewnia noworodkowi ochronę przed infekcjami.
Mechanizm takiego przezłożyskowego transferu
jest zatem ważnym modulatorem odporności noworodka.
Zagadnienie to omówiono w dalszej części
artykułu.
Łożysko stanowi barierę, która może, przynajmniej
częściowo, kontrolować i utrudniać przenikanie
szkodliwych substancji z organizmu matki
do płodu, dlatego przeniesienie do płodu matczynych
przeciwciał swoistych patogenów wymaga aktywnego
transportu, przeznaczonego tylko do tego
celu. Kluczową rolę w tej kwestii odgrywa noworodkowy
receptor Fc (FcRn). Poza innymi tkankami
ulega on ekspresji w syncytiotrofoblaście
łożyska. FcRn należy do rodziny receptorów Fcγ,
przyłącza fragment Fc przeciwciał IgG i umożliwia
ich transport do tych miejsc organizmu, gdzie
potrzebna jest swoista odporność.66 Wiązanie IgG
przez FcRn jest wysoce pH-zależne.67 W kwaśnym
środowisku FcRn wykazuje znacznie większe powinowactwo
do IgG niż w fizjologicznym pH 7,4,
jakie panuje we krwi matki i płodu. W związku z tym matczyne przeciwciała nie mogą się połączyć z FcRn na szczytowej powierzchni syncytiotrofoblastu,
którą omywa krew matki, lecz muszą
ulec endocytozie (ryc. 2.). Ilość przeciwciał, które
mogą być przekazane do płodu, zależy od gęstości
FcRn w syncytiotrofoblaście. Jeżeli wszystkie
FcRn są zaangażowane w transport IgG, nadmiar
cząsteczek IgG jest degradowany w lizosomach,
ponieważ nie są one związane z receptorem. Zatem
transfer przeciwciał jest to proces, który ulega
wysyceniu i zatrzymuje się, gdy stężenie matczynych
przeciwciał osiągnie pewien poziom zdefiniowany
jako całkowite stężenie IgG wynoszące
15 g/l.68 Przezłożyskowy transport IgG rozpoczyna
się we wczesnym etapie ciąży,10,69 ale wydajność
tego procesu jest mała. Wraz z rozwojem ciąży
ekspresja FcRn i transport przezłożyskowy zwiększa
się, osiągając szczyt w ostatnich 4 tygodniach
ciąży.9 Przypuszcza się, że zwiększająca się masa
rosnącego łożyska odpowiada za samo zwiększenie
liczby FcRn i wynikające z tego nasilenie transportu
przeciwciał.

Ryc. 2. Mechanizmy transferu przeciwciał przez łożysko i tkanki gruczołu mlekowego. Rycina górna: Krążące przeciwciała IgG są wchłaniane do komórek syncytiotrofoblastu, gdzie dwie cząsteczki IgG wiążą się poprzez receptor FcRn z błoną wewnętrzną endosomów w środowisku o odczynie kwaśnym. Po otwarciu endosomu przy podstawno bocznej powierzchni komórki od strony naczyń krwionośnych płodu, FcRn uwalnia cząsteczki IgG na skutek zwiększonego pH, a następnie ulega recyrkulacji i proces transportu immunoglobulin powtarza się. Rycina dolna: łańcuch łączący dimeru IgA wiąże się z receptorem dla polimerycznych immunoglobulin (PIgR), a następnie razem z pIgR ulega internalizacji na drodze endocytozy. W błonie szczytowej wydzielnicze IgA (sIgA) są wydzielane do mleka, wydzielnicza część pIgR pozostaje związana z przeciwciałami IgA.
Jak dotąd przeprowadzono bardzo mało badań
nad czynnikami oddziałującymi na ekspresję
FcRn. W 1 badaniu oceniono wpływ suplementacji
witaminy A w czasie ciąży na odpowiedź immunologiczną
ciężarnej na szczepionkę przeciwko
grypie. Zasugerowano, że witamina A może wpływać
na ekspresję FcRn, są to jednak wyłącznie
przypuszczenia oparte na obserwacji bardzo małej
grupy.70 Brakuje również danych na temat zależności
między płcią a łożyskową ekspresją FcRn.
Interesujące jest, że poszczególne podklasy
IgG są przekazywane do płodu w różnym stopniu,
ponieważ FcRn transportuje głównie IgG1,
przy zmniejszającym się transporcie IgG4, IgG3 i IgG2.69 Strukturalnie różne antygeny wzbudzają
produkcję różnych podklas IgG, dlatego ilość przekazywanych
przeciwciał się zmienia. Antygeny
białkowe, takie jak PT i PRN, toksyna tężcowa lub
wirus odry, wzbudzają produkcję IgG1, a antygeny
polisacharydowe obecne na powierzchni takich
bakterii, jak Haemophilus influenzae typu b lub
Neisseria meningitidis, stymulują wytwarzanie
IgG2.2 Ponieważ podklasa IgG2 jest transportowana
mniej efektywnie, noworodki mogą nie mieć
swoistej odporności na patogeny, które prezentują
głównie antygeny polisacharydowe, tak jak większość
bakterii.
Czynnikiem przezłożyskowego transferu
przeciwciał o największej wartości predykcyjnej
jest stężenie matczynych przeciwciał.10 Zaobserwowano, że pozytywny wpływ na stężenie matczynych
przeciwciał u dziecka miał starszy wiek
ciążowy, niedawno wykonane szczepienia u matki,
zbilansowana dieta matki i płeć męska noworodka.1,71,72
W badaniu przeprowadzonym kilka dekad temu
wykazano, że poza IgG transportowanymi przez
łożysko jako pojedyncze cząsteczki możliwy jest
również transport kompleksów immunologicznych
IgG i odpowiednich antygenów.73 Stężenie antygenu
tężcowego w surowicy osiągnęło niemal ten
sam poziom u matki i dziecka w momencie porodu,
co sugeruje aktywny transfer kompleksów
immunologicznych z przeciwciałami przeciwtężcowymi.
Aktywny transfer nie występuje w przypadku
różnych białek związanych z ciążą, takich jak
alfa-fetoproteina (AFP) i ludzka gonadotropina kosmówkowa
(hCG), ponieważ ich stężenie znacznie
się różni u matki i dziecka, co wskazuje, że przechodzenie
tych substancji odbywa się na zasadzie
dyfuzji o małej szybkości. W nowszym badaniu
opisano swoiste dla grypy płodowe przeciwciała w klasie IgM, które wykryto we krwi pępowinowej
po szczepieniu matki przeciwko grypie. Obserwacje
te sugerują, że do płodu zostały przekazane
kompleksy immunologiczne z przeciwciałami przeciwko
grypie, które wzbudziły płodową swoistą odpowiedź z udziałem limfocytów B i T.74 Uwzględniając
obserwacje wskazujące, że przeciwciała IgE
(odgrywające główną rolę w patogenezie alergii)
również mogą być transportowane przez łożysko
jako kompleksy IgG-IgE,75 wszystkie te dane mają
duże znaczenie w zrozumieniu odporności noworodka i rozwoju atopii u dzieci.
Transfer przeciwciał z mlekiem matki
Istotny wpływ na odporność noworodka ma spożywanie
mleka matki, które zawiera dużą ilość
wydzielniczych IgA. W mleku kobiecym można
również wykryć matczyne komórki układu odpornościowego,
na przykład limfocyty B pamięci
produkujące IgG i limfocyty T CD4+.9,76
Przeciwciała IgA w postaci dimeru są produkowane
przez plazmocyty w gruczole mlekowym oraz w innych tkankach związanych z błonami śluzowymi.
Komórki nabłonkowe pęcherzyków mlecznych
transportują cząsteczki IgA z tkanki łącznej
do mleka poprzez transcytozę (ryc. 2.), z udziałem
receptorów dla polimerycznych immunoglobulin
(pIgR).77,78 Dystrybucja dwóch obecnych u ludzi
podklas IgA – IgA1 i IgA2 – jest różna, IgA1
stwierdza się głównie w drogach oddechowych,
surowicy, ślinie i skórze, a IgA2 jest głównym
przeciwciałem wydzielniczym jelit.79 W ważnym
artykule przeglądowym Hanson i Winberg już wywnioskowali,
że przeciwciała IgA obecne w mleku
nie są wchłaniane w jelitach dziecka, lecz raczej
pokrywają ich błonę śluzową, aby chronić je przed
drobnoustrojami chorobotwórczymi.80
W wielu badaniach wykazano, że karmienie
naturalne jest korzystne dla zdrowia noworodka
(tab.). Jednym z przykładów jest wzmożony transfer z mlekiem matki swoistych dla grypy, neutralizujących
przeciwciał IgA u dzieci matek zaszczepionych w ciąży przeciwko grypie,81 co wiązało
się z mniejszą liczbą zachorowań na infekcje dróg
oddechowych w ciągu pierwszych 6 miesięcy życia.
To, czy efekt ten faktycznie wynika ze zwiększonej
ilości swoistych IgA w mleku, czy może z przezłożyskowego
transportu swoistych przeciwciał IgG
wymaga jeszcze wyjaśnienia. W uzyskaniu odpowiedzi
mogłyby pomóc badania wykorzystujące
metodę krzyża wychowawczego (cross-fostering), a biorąc pod uwagę zwiększającą się liczbę banków
mleka, takie badania są możliwe do przeprowadzenia.
W innym niedawno opublikowanym badaniu
wskazano, że ochrona przed martwiczym zapaleniem
jelit (NEC) u wcześniaków zależy od obecności
przeciwciał IgA w mleku.82 Wydaje się, że w patogenezie NEC głównym mechanizmem jest
zmienione wiązanie się sIgA z bakteriami jelitowymi,
ponieważ odsetek bakterii związanych z IgA był znacznie mniejszy u dzieci, u których
rozpoznano NEC, niż u zdrowych noworodków.
Dzieci karmione mlekiem modyfikowanym były
narażone na większe ryzyko NEC niż dzieci karmione
mlekiem kobiecym. Mogło to wynikać z braku
IgA w mieszance mlecznej.
Należy również zauważyć, że u kobiet chorujących
na infekcyjne zapalenie dróg oddechowych w czasie ciąży odsetek IgA1 w siarze był większy,
natomiast u kobiet z infekcjami przewodu pokarmowego
zwiększyło się stężenie IgA2.83 Te obserwacje
wskazują, że układ odpornościowy matki
próbuje chronić dziecko przed konkretnymi patogenami
obecnymi w najbliższym środowisku.
Podobnie jak wykazano na modelach zwierzęcych,
matczyne przeciwciała mogą „przetrzymywać”
cząsteczki drobnoustrojów i przekazywać je
przez łożysko lub w mleku. W efekcie potomstwo
może uniknąć odpowiedzi zapalnej na antygeny
drobnoustrojów oraz umożliwić kolonizację jelit
bakteriami.84
Ogólnie korzyści z karmienia naturalnego
dla zdrowia dziecka obejmują działanie na błony
śluzowe różnych układów (np. oddechowego, pokarmowego),
dzięki czemu dziecko jest chronione
przed infekcjami. Zatem aktualne zalecenia WHO
dotyczące wyłącznego karmienia piersią przez
pierwszych 6 miesięcy życia85 może faktycznie
zapewnić optymalne warunki wyjściowe dla odporności
dziecka po urodzeniu.
Matczyny mikrochimeryzm
Poza odpornością zależną od przeciwciał przekazywanych w czasie ciąży, możliwe jest również, że
do organizmu płodu przedostają się komórki swoiście
rozpoznające antygen. Wiadomo, że komórki
układu odpornościowego matki mogą przenikać
przez łożysko86 oraz z mlekiem.76 Komórki te mogą
przetrwać w organizmie dziecka aż do osiągnięcia
dorosłości, co potwierdzono, oceniając komórki linii
mieloidalnej i limfoidalnej we krwi obwodowej u dorosłej zdrowej kobiety.87 Z uwagi na małą liczbę
takich komórek określa się je jako matczyne
komórki mikrochimeryczne, a ich istotny odsetek
stanowią długo żyjące limfocyty T.88
Po przebyciu infekcji swoiste limfocyty T CD8+
pozostają w tkankach obwodowych i pełnią funkcję
komórek wartowniczych. Przy ponownym kontakcie z antygenem komórki te szybko produkują
cytokiny prozapalne, wprowadzają w ten sposób
stan gotowości w lokalnym środowisku i rekrutują
komórki stanu zapalnego. Zatem mała liczba
swoistych dla drobnoustroju limfocytów T wzbudza
szybką odpowiedź o piorunującym przebiegu.89,90 Co interesujące, w odniesieniu do ciąży
istnieją bezpośrednie dowody na przekazywanie
ochronnych matczynych limfocytów T. U niemowlęcia z ciężkim złożonym niedoborem odporności, u którego doszło do zakażenia wirusem Epsteina i Barr (EBV), wykryto dużą liczbę matczynych
limfocytów T CD8+. Komórki te miały fenotyp
komórek aktywowanych i wydzielały IFN-γ w odpowiedzi
na antygeny EBV. Inne komórki układu
krwiotwórczego posiadały genotyp dziecka, co
wskazuje, że limfocyty T CD8+ pochodziły od dojrzałych
matczynych limfocytów T, a nie z przekazanych
macierzystych komórek krwiotwórczych.91
Co więcej, częstsze występowanie efektorowych
limfocytów T CD8+ skierowanych przeciwko konserwatywnym
epitopom białek rdzeniowych wirusów
grypy korelowało z łagodniejszym przebiegiem
grypy wywołanej przez inne szczepy wirusa, co
silnie przemawia za ochroną krzyżową zapewnianą przez limfocyty T pamięci CD8+ przed heterologicznymi
szczepami wirusa.92 Patrząc na te empiryczne
dowody, można spekulować, że swoiste
dla drobnoustrojów matczyne mikrochimeryczne
limfocyty T również zapewniają dziecku bierną
odporność komórkową.
Niekorzystny efekt odporności biernej noworodka
Wpływ matczynych przeciwciał na odpowiedź dziecka na szczepienia
Mimo znacznych korzyści dla zdrowia matki i dziecka wynikających ze szczepienia w czasie
ciąży, istnieją również wady takiej profilaktyki. W wielu badaniach wykazano, że obecność u niemowlęcia przeciwciał matczynych w dużym
stężeniu utrudnia odpowiedź immunologiczną
na szczepienia stosowane rutynowo u dzieci, niezbędną
do wytworzenia odporności humoralnej.68
Ten hamujący wpływ matczynych przeciwciał
na produkcję przeciwciał przez układ odpornościowy
noworodka, często określany jako osłabienie,
stłumienie odpowiedzi (blunting), utrzymuje się
nawet przez ponad rok, w zależności od stężenia
matczynych przeciwciał we krwi dziecka przy urodzeniu.
Co ciekawe, to zjawisko osłabienia występuje
niezależnie od tego, jaką szczepionkę podano
dziecku, na przykład przeciwko odrze, grypie czy
krztuścowi.68
Zjawisko osłabienia odpowiedzi immunologicznej
dziecka najczęściej tłumaczy się utworzeniem
mostka między receptorem limfocytów B (BCR) a receptorem dla Fcγ (FcγRIIB).68,93 Oba te receptory
są obecne na limfocytach B. Każdy BCR ma
powinowactwo do konkretnego epitopu patogenu,
rozpoznawanego również przez swoiste matczyne
przeciwciała. Przeciwciała te mogą się związać z receptorem FcγRIIB poprzez fragment Fc.
Gdy dziecko otrzymuje szczepionkę, antygeny
drobnoustroju dostają się do krwioobiegu i mogą
się równocześnie związać z BCR oraz matczynymi
przeciwciałami, co skutkuje powstaniem przeciwstawnych
sygnałów w limfocycie B. Podczas gdy
BCR rozpoznaje nowy antygen i wzbudza sygnały
prowadzące do różnicowania się limfocytów B w plazmocyty i produkcji przeciwciał, FcγRIIB
sygnalizuje obecność przeciwciał swoistych dla
tego konkretnego antygenu i hamuje ich dalszą
produkcję. W efekcie stymulujący sygnał BCR jest
hamowany i układ odpornościowy niemowlęcia nie
może zainicjować produkcji przeciwciał (ryc. 3.).
Ryc. 3. Po ekspozycji noworodka na antygeny szczepionkowe są one rozpoznawane przez swoiste receptory
limfocytów B (BCR). Jeżeli we krwi dziecka obecne są przeciwciała matczyne, wiążą się one z antygenem
szczepionkowym oraz z receptorem dla fragmentu Fc (FcRIIB), który jest również obecny na limfocytach B. W wyniku tego BCR i FcRIIB ulegają sieciowaniu, co hamuje produkcję przeciwciał przez limfocyty B
po rozpoznaniu antygenu.
Niedawno przeprowadzono duże badanie, w którym szczegółowo oceniono zjawisko osłabienia
odpowiedzi immunologicznej dziecka przez
matczyne przeciwciała.94 W badaniu skupiono
się na wpływie szczepienia kobiet w czasie ciąży
preparatami IIV lub Tdap na odpowiedź dziecka
na szczepienia typowo podawane we wczesnym
okresie życia, tj. przeciwko wirusowemu zapaleniu
wątroby typu B, tężcowi, błonicy, krztuścowi,
polio, pneumokokom, rotawirusom, MMR oraz
przeciwko meningokokom. Szczepienie przeciwko
grypie nie interferowało z odpowiedzią dziecka
na szczepienia, natomiast szczepienie matki Tdap
wiązało się ze znamiennie mniejszą odpowiedzią
dziecka na swoiste (błonicze i krztuścowe) oraz
heterologiczne antygeny (polio i pneumokokowe).
Te obserwacje wzbudziły przypuszczenia, że
matczyne przeciwciała obecne u dziecka łączą
się z pochodzącym od toksyny błoniczej białkiem
nośnikowym szczepionki przeciwko pneumokokom
zanim dziecko wytworzy odpowiedź immunologiczną
na heterologiczny antygen związany z białkiem nośnikowym. Opisano również mniejsze
osłabienie odpowiedzi dziecka po szczepieniu
preparatem z bezkomórkowymi komponentami
pałeczki krztuśca (DTaP) niż w przypadku preparatu
całokomórkowego.19 W celu zebrania danych
wspierających strategię szczepień ciężarnych przeprowadzono
badania oceniające wpływ szczepienia
uzupełniającego DTaP w wieku 13 lub 15 miesięcy u dzieci matek szczepionych Tdap w czasie ciąży.
Stwierdzono, że ta kolejna dawka szczepionki
nie była już wrażliwa na wcześniej obserwowane
zjawisko stłumienia odpowiedzi immunologicznej
spowodowane dużym stężeniem matczynych
przeciwciał.95,96
Obecnie testuje się metody umożliwiające uniknięcie
zjawiska osłabienia odpowiedzi immunologicznej,
takie jak alternatywne drogi podania
szczepionek oraz równoczesne podanie szczepionki i antygenowo swoistych IgM lub substancji
stymulujących produkcję interferonu alfa.68
Sugerowano, że takie czynniki przeciwdziałają
hamującemu sygnałowi z FcγRIIB, co prowadzi
do aktywacji limfocytów B i produkcji przeciwciał
po szczepieniu, nawet w przypadku obecności
matczynych przeciwciał. Poza tym w badaniach
przeprowadzonych około 20 lat temu i dawniej wykazano,
że matczyne przeciwciała nie wpływają
na proces pobudzania dziewiczych limfocytów T
niemowlęcia.97-99 Te obserwacje wskazują, że można
uzyskać wystarczającą ochronę, gdy matczyne
przeciwciała zanikają, a dziecko ma około 6 miesięcy,
nawet jeśli pierwsze szczepienie nie wzbudzi
wystarczającej odpowiedzi humoralnej.
Zagadnienie osłabienia odpowiedzi immunologicznej
nie jest jednoznaczne, ponieważ nie
wszystkie badania potwierdziły występowanie
tego zjawiska.22 Konieczne są dalsze badania
wyjaśniające mechanizmy stłumienia odpowiedzi
immunologicznej oraz aktywacji limfocytów T, aby
zapewnić jak największą skuteczność szczepień
niemowląt. Osłabienie odpowiedzi niemowlęcia
na szczepienia może zwiększać ryzyko wystąpienia
niektórych infekcji we wczesnym okresie życia.
Biorąc pod uwagę korzyści wynikające z odporności
przekazywanej dziecku przez matkę, osłabienie
odpowiedzi immunologicznej dziecka uważa się
jednak za akceptowalny kompromis.94
Warto zauważyć, że w latach 80. opublikowano
wiele artykułów opisujących zjawisko przekazywania
przez łożysko i z mlekiem matki przeciwciał
antyidiotypowych,100 które rozpoznają wzorce molekularne
(idiotypy) zlokalizowane blisko miejsca
wiązania antygenu przeciwciał swoistych dla patogenu.
Są one produkowane w ramach procesu
regulacji odpowiedzi immunologicznej. Fragment
przeciwciał antyidiotypowych zawiera w sobie
„obraz wewnętrzny” antygenu, przeciwko któremu
są skierowane ich przeciwciała idiotypowe,
dlatego uważa się, że przeciwciała anty-idiotypowe
stymulują limfocyty B w sposób niezależny
od antygenu i w efekcie stymulują produkcję
antygenowo swoistych przeciwciał zawierających
idiotyp, o właściwościach neutralizujących dany
antygen.101-104 Zaobserwowano, że małe stężenia
przeciwciał antyidiotypowych matczynego pochodzenia
miały istotny aktywujący wpływ na układ
odpornościowy potomstwa, chroniąc noworodki
mysie przed drobnoustrojami chorobotwórczymi.104 I odwrotnie, duże stężenie matczynych
przeciwciał idiotypowych i antyidiotypowych nabytych
przez łożysko lub z mlekiem matki może
osłabić odpowiedź immunologiczną u potomstwa.
Zatem, opierając się na teorii sieci immunologicznej
Jerne’a,105 u podłoża odpowiedzi niemowlęcia
na szczepienia leżą złożone mechanizmy, w tym
przeciwciała idiotypowe i antyidiotypowe. Uderzające
jest to, że stosując monoklonalne przeciwciała
antyidiotypowe jako szczepionkę do immunizacji
przeciwko odrze, śwince i różyczce, czyli chorobom,
przeciwko którym szczepienia obecnie wykonuje
się w późniejszych miesiącach życia, można by
uzyskać ochronę już przy urodzeniu. Pozwoliłoby
to zmniejszyć ryzyko infekcji w tym wrażliwym
okresie pierwszych miesięcy życia i zmniejszyłoby
obciążenie chorobami u młodszych niemowląt.
Przestrzeganie zaleceń dotyczących szczepień w czasie ciąży
Mimo wielu danych potwierdzających korzyści ze szczepień w ciąży dla matki i dziecka, wiele kobiet w wieku rozrodczym z nich nie korzysta, co jest niepokojącym zjawiskiem. Wynika to z różnych czynników, w tym zaniedbań ze strony lekarzy, którzy nie informują o szczepieniach, ograniczonej dostępności i dużych kosztów szczepionek, wątpliwości odnośnie do ich skuteczności oraz obaw o bezpieczeństwo szczepień dla matki i płodu.106,107 Należy mieć nadzieję, że coraz więcej danych potwierdzających korzyści ze strategii szczepień dla zdrowia matki i dziecka oraz komunikacja z naukowcami, społeczeństwem i innymi zainteresowanymi stronami wkrótce przełoży się na przestrzeganie zaleceń.
Podsumowanie
Liczne opublikowane dane wyraźnie wskazują, że szczepienia ciężarnych są korzystne nie tylko dla zdrowia matki, ale również jej dziecka. Szczególnie dużo dowodów na immunogenność, bezpieczeństwo i skuteczność w zakresie ochrony noworodka dostępnych jest w odniesieniu do szczepionek przeciwko tężcowi, błonicy i krztuścowi oraz przeciwko grypie podawanych kobietom w ciąży. Ochronę tę potwierdza nie tylko obecność u dziecka swoistych dla drobnoustrojów matczynych przeciwciał, ale faktycznie mniejsze ryzyko zachorowania na krztusiec oraz szeroka ochrona przed infekcjami dolnych dróg oddechowych, wywołanych również przez inne wirusy niż wirus grypy. Należy jednak zauważyć, że wadą dużego stężenia matczynych przeciwciał przeciwko drobnoustrojom chorobotwórczym jest hamujący wpływ na odpowiedź immunologiczną u dziecka, co wydaje się upośledzać jego odpowiedź na szczepienia wykonywane we wczesnym okresie życia i stanowić zagrożenie dla zdrowia niemowlęcia. Zmniejszone ryzyko infekcji dzięki odporności nabytej od matki jednoznacznie wskazuje, że korzyść ta przeważa nad niepożądanym efektem stłumienia odpowiedzi immunologicznej. Potwierdzono to w niedawno opublikowanym badaniu, w którym zaobserwowano, że w porównaniu z dziećmi bez matczynych przeciwciał, szczepienie przeciwko odrze dzieci, u których obecne były matczyne przeciwciała przeciwko odrze, wiązało się ze znamiennym zmniejszeniem ogólnej umieralności niemowląt (dane pochodziły z badań przeprowadzonych w Gwinei Bissau – przyp. red.).108 Na koniec należy również wspomnieć, że małe zainteresowanie szczepieniami to wyzwanie, z którym należy się niezwłocznie zmierzyć. Pomocne może być na przykład wdrożenie programów szczepień kobiet w ciąży, których zadaniem będzie edukacja i informowanie o korzyściach ze szczepień oraz ich rutynowe proponowanie ciężarnym, co zwiększy chęć poddania się szczepieniu, a w dalszej kolejności wskaźniki wyszczepialności wśród ciężarnych.
Udział autorów w powstaniu artykułu: M.A. i P.A. wspólnie
przygotowały zarys artykułu, opracowały ryciny i napisały artykuł
przeglądowy.
Konflikt interesów: Autorki deklarują, że badanie przeprowadzono
bez żadnego powiązania komercyjnego lub finansowego, które
mogłoby powodować konflikt interesów.
Piśmiennictwo:
1. Meng Q.H., Liu Y., Yu J.Q., et al.: Seroprevalence of maternal and cord antibodies specific for diphtheria, tetanus, pertussis, measles, mumps and rubella in Shunyi, Beijing. Sci. Rep., 2018; 8: 13 0212. de Voer R.M., van der Klis F.R., Nooitgedagt J.E., et al.: Seroprevalence and placental transportation of maternal antibodies specific for Neisseria meningitidis serogroup C, Haemophilus influenzae type B, diphtheria, tetanus, and pertussis. Clin. Infect. Dis., 2009; 49: 58–64
3. Vilajeliu A., Goncé A., López M., et al.: Combined tetanus-diphtheria and pertussis vaccine during pregnancy: transfer of maternal pertussis antibodies to the newborn. Vaccine, 2015; 33: 1056–1062
4. Blanchard-Rohner G., Meier S., Bel M., et al.: Influenza vaccination given at least 2 weeks before delivery to pregnant women facilitates transmission of seroprotective influenza-specific antibodies to the newborn. Pediatr. Infect. Dis. J., 2013; 32: 1374–1380
5. Xiong Y., Wang D., Lin W., Tang H., Chen S., Ni J.: Age-related changes in serological susceptibility patterns to measles: results from a seroepidemiological study in Dongguan, China. Hum. Vaccin. Immunother., 2014; 10: 1097–1103
6. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) Updated recommendations for use of tetanus toxoid, reduced diphtheria toxoid, and acellular pertussis vaccine (Tdap) in pregnant women–advisory committee on immunization practices (ACIP), 2012. MMWR, 2013; 62: 131–135
7. McLean H.Q., Fiebelkorn A.P., Temte J.L., Wallace G.S.; Centers for Disease Control and Prevention: Prevention of measles, rubella, congenital rubella syndrome, and mumps, 2013: summary recommendations of the advisory committee on immunization practices (ACIP). MMWR Recomm. Rep., 2013; 62: 1–34
8. Leuridan E., Van Damme P.: Passive transmission and persistence of naturally acquired or vaccine-induced maternal antibodies against measles in newborns. Vaccine, 2007; 25: 6296–6304
9. Marchant A., Sadarangani M., Garand M., et al.: Maternal immunisation: collaborating with mother nature. Lancet Infect. Dis., 2017; 17: e197–e208
10. Pou C., Nkulikiyimfura D., Henckel E., et al.: The repertoire of maternal anti-viral antibodies in human newborns. Nat. Med., 2019; 25: 591–596
11. Cetin Coban S., Temel F., Duman P., et al.: Prevalence of protective measles virus antibody levels in umbilical cord blood samples and sera of mothers and transplacental transport ratio in Turkey. Jpn. J. Infect. Dis., 2019; 72: 185–192
12. Maertens K., Caboré R.N., Huygen K., et al.: Pertussis vaccination during pregnancy in Belgium: results of a prospective controlled cohort study. Vaccine, 2016; 34: 142–150
13. World Health Organization Fact Sheet: Measles. 2019 Available online at: www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/measles (accessed December 20, 2019)
14. Swamy G.K., Heine R.P.: Vaccinations for pregnant women. Obstet. Gynecol., 2015; 125: 212–226
15. Moniz M.H., Beigi R.H.: Maternal immunization. Clinical experiences, challenges, and opportunities in vaccine acceptance. Hum. Vaccin. Immunother., 2014; 10: 2562–2570
16. Abu Raya B., Edwards K.M., Scheifele D.W., Halperin S.A.: Pertussis and influenza immunisation during pregnancy: a landscape review. Lancet Infect. Dis., 2017; 17: e209–e222
17. World Health Organization Protecting all Against Tetanus: Guide to sustaining maternal and neonatal tetanus elimination (MNTE) and broadening tetanus protection for all populations. 2019 Available online at: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/
18. World Health Organization The Immunological Basis for Immunization Series. Module 2: Diphtheria Update 2009. Available online at: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/(accessed December 18, 2019)
19. Villarreal Pérez J.Z., Ramírez Aranda J.M., de la O Cavazos M., et al.: Randomized clinical trial of the safety and immunogenicity of the Tdap vaccine in pregnant Mexican women. Hum. Vaccin. Immunother., 2017; 13: 128–135
20. Wong K.H., Skelton S.K.: New, practical approach to detecting antibody to pertussis toxin for public health and clinical laboratories. J. Clin. Microbiol., 1988; 26: 1316–1320
21. Hellwig S.M., Rodriguez M.E., Berbers G.A., van de Winkel J.G., Mooi F.R.: Crucial role of antibodies to pertactin in Bordetella pertussis immunity. J. Infect. Dis., 2003; 188: 738–742
22. Wood N., McIntyre P., Marshall H., Roberton D.: Acellular pertussis vaccine at birth and one month induces antibody responses by two months of age. Pediatr. Infect. Dis. J., 2010; 29: 209–215
23. Bosch J.J., Fernández H., Polak F.P., et al.: Seroprevalence of Bordetella pertussis among vaccinated and unvaccinated pregnant women and newborn infants in a university hospital of Buenos Aires. Arch. Argent. Pediatr., 2017; 115: 311–315
24. Griffin J.B., Yu L., Watson D., et al.: Pertussis immunisation in pregnancy safety (PIPS) study: a retrospective cohort study of safety outcomes in pregnant women vaccinated with Tdap vaccine. Vaccine, 2018; 36: 5173–5179
25. MacDorman M.F., Mathews T.J.: Understanding racial and ethnic disparities in U.S. infant mortality rates. NCHS Data Brief No 74. Hyattsville, MD, National Center for Health Statistics, 2011: 1–8
26. Kim M.K., Lee S.M., Bae S.H., et al.: Socioeconomic status can affect pregnancy outcomes and complications, even with a universal healthcare system. Int. J. Equity Health, 2018; 17: 2
27. Centers for Disease Control and Prevention Pregnancy Mortality Surveillance System. 2019 Available online at: www.cdc.gov/reproductivehealth/maternal-mortality/pregnancy-mortality-surveillance-system.htm (accessed December 18, 2019)
28. Saul N., Wang K., Bag S., et al.: Effectiveness of maternal pertussis vaccination in preventing infection and disease in infants: the NSW public health network case-control study. Vaccine, 2018; 36: 1887–1892
29. Bellido-Blasco J., Guiral-Rodrigo S., Míguez-Santiyán A., Salazar-Cifre A., González-Morán F.: A case-control study to assess the effectiveness of pertussis vaccination during pregnancy on newborns, Valencian community, Spain, 1 March 2015 to 29 February 2016. Euro Surveill., 2017; 22: 30 545
30. National Health Service Whooping Cough Vaccination in Pregnancy. 2019 Available online at: www.nhs.uk/conditions/pregnancy-and-baby/whooping-cough-vaccination-pregnant/ (accessed November 03, 2019)
31. Abu Raya B., Srugo I., Kessel A., et al.: The effect of timing of maternal tetanus, diphtheria, and acellular pertussis (Tdap) immunization during pregnancy on newborn pertussis antibody levels – a prospective study. Vaccine, 2014; 32: 5787–5793
32. Naidu M.A., Muljadi R., Davies-Tuck M.L., Wallace E.M., Giles M.L.: The optimal gestation for pertussis vaccination during pregnancy: a prospective cohort study. Am. J. Obstet. Gynecol., 2016; 215: e1–e6
33. Eberhardt C.S., Blanchard-Rohner G., Lemaître B., et al.: Maternal immunization earlier in pregnancy maximizes antibody transfer and expected infant seropositivity against pertussis. Clin. Infect. Dis., 2016; 62: 829–836
34. Lim G.H., Deeks S.L., Crowcroft N.S.: A cocoon immunisation strategy against pertussis for infants: does it make sense for Ontario? Euro Surveill., 2014; 19: 20 688
35. Forsyth K., Plotkin S., Tan T., Wirsing von König C.H.: Strategies to decrease pertussis transmission to infants. Pediatrics, 2015; 135: e1475–e1482
36. Engels G., Hierweger A.M., Hoffmann J., et al.: Pregnancy-related immune adaptation promotes the emergence of highly virulent H1N1 influenza virus strains in allogenically pregnant mice. Cell Host. Microbe, 2017; 21: 321–333
37. Robert Koch-Institut Ständige impfkommission: empfehlungen der Ständigen impfkommission beim Robert Koch-Institut – 2019/2020. Epid. Bull., 2019; 34: 313–364
38. Centers for Disease Control and Prevention (CDC): Prevention and control of seasonal influenza with vaccines. Recommendations of the advisory committee on immunization practices – United States, 2013–2014. MMWR Recomm. Rep., 2013; 62: 1–43
39. Faucette A.N., Unger B.L., Gonik B., Chen K.: Maternal vaccination: moving the science forward. Hum. Reprod. Update, 2015; 21: 119–135
40. Munoz F.M., Jackson L.A., Swamy G.K., et al.: Safety and immunogenicity of seasonal trivalent inactivated influenza vaccines in pregnant women. Vaccine, 2018; 36: 8054–8061
41. Kharbanda E.O., Vazquez-Benitez G., Romitti P.A., et al.: First trimester influenza vaccination and risks for major structural birth defects in offspring. J. Pediatr., 2017; 187: 234–239
42. Steinhoff M.C., Omer S.B., Roy E., et al.: Neonatal outcomes after influenza immunization during pregnancy: a randomized controlled trial. CMAJ, 2012; 184: 645–653
43. Mutsaerts E., Madhi S.A., Cutland C.L., et al.: Influenza vaccination of pregnant women protects them over two consecutive influenza seasons in a randomized controlled trial. Expert Rev. Vaccines, 2016; 15: 1055–1062
44. Nunes M.C., Cutland C.L., Jones S., et al.: Duration of infant protection against influenza illness conferred by maternal immunization: secondary analysis of a randomized clinical trial. JAMA Pediatr., 2016; 170: 840–847
45. Zaman K., Roy E., Arifeen S.E., et al.: Effectiveness of maternal influenza immunization in mothers and infants. N. Engl. J. Med., 2008; 359: 1555–1564
46. Nunes M.C., Cutland C.L., Jones S., et al.: Efficacy of maternal influenza vaccination against all-cause lower respiratory tract infection hospitalizations in young infants: results from a randomized controlled trial. Clin. Infect. Dis., 2017; 65: 1066–1071
47. Eick A.A., Uyeki T.M., Klimov A., et al.: Maternal influenza vaccination and effect on influenza virus infection in young infants. Arch. Pediatr. Adolesc. Med., 2011; 165: 104–111
48. Nunes M.C., Cutland C.L., Madhi S.A.: Influenza vaccination during pregnancy and protection against pertussis. N. Engl. J. Med., 2018; 378: 1257–1258
49. Gabriel G., Arck P.C.: Sex, immunity and influenza. J. Infect. Dis., 2014; 209 (suppl. 3): S93–S99
50. White S.J., Boldt K.L., Holditch S.J., Poland G.A., Jacobson R.M.: Measles, mumps, and rubella. Clin. Obstet. Gynecol., 2012; 55: 550–559
51. Sukumaran L., McNeil M.M., Moro P.L., et al.: Adverse events following measles, mumps, and rubella vaccine in adults reported to the vaccine adverse event reporting system (VAERS), 2003–2013. Clin. Infect. Dis., 2015; 60: e58–e65
52. World Health Organization Ten Threats to Global Health in 2019. 2019 Available online at: www.who.int/emergencies/ten-threats-to-global-health-in-2019 (accessed December 13, 2019)
53. Centers for Disease Control and Prevention Epidemiology and Prevention of Vaccine – Preventable Diseases. Chapter 13: Measles. 2019 Available online at: www.cdc.gov/vaccines/pubs/pinkbook/meas.html (accessed December 13, 2019)
54. Petrova V.N., Sawatsky B., Han A., et al.: Incomplete genetic reconstitution of B cell pools contributes to prolonged immunosuppression after measles. Sci. Immunol., 2019; 4: eaay6125
55. Mina M.J., Kula T., Leng Y., et al.: Measles virus infection diminishes preexisting antibodies that offer protection from other pathogens. Science, 2019; 366: 599–606
56. Statistisches Bundesamt Demografischer Wandel. 2019 Available online at: www.destatis.de/DE/Themen/Querschnitt/Demografischer-Wandel/_inhalt.html (accessed December 20, 2019)
57. Gonçalves G., Nunes C., Mesquita J.R., Nascimento M.S., Frade J.: Measles antibodies in cord blood in Portugal: possible consequences for the recommended age of vaccination. Vaccine, 2016; 34: 2750–2757
58. Linder N., Tallen-Gozani E., German B., et al.: Placental transfer of measles antibodies: effect of gestational age and maternal vaccination status. Vaccine, 2004; 22: 1509–1514
59. van den Berg J.P., Westerbeek E.A., Smits G.P., et al.: Lower transplacental antibody transport for measles, mumps, rubella and varicella zoster in very preterm infants. PLoS One, 2014; 9: e94714
60. Leuridan E., Hens N., Hutse V., et al.: Early waning of maternal measles antibodies in era of measles elimination: longitudinal study. Bmj, 2010; 340: c1626
61. Kamat M., Pyati S., Pildes R.S., et al.: Measles antibody titers in early infancy. Arch. Pediatr. Adolesc. Med., 1994; 148: 694–698
62. Cradock-Watson J.E., Ridehalgh M.K., Anderson M.J., et al.: Outcome of asymptomatic infection with rubella virus during pregnancy. J. Hyg. (Lond), 1981; 87: 147–154
63. Morgan-Capner P., Hodgson J., Hambling M.H., et al.: Detection of rubella-specific IgM in subclinical rubella reinfection in pregnancy. Lancet, 1985; 325: 244–246
64. Best J.M., Banatvala J.E., Morgan-Capner P., Miller E.: Fetal infection after maternal reinfection with rubella: criteria for defining reinfection. BMJ, 1989; 299: 773–775
65. Gilbert J., Kudesia G.: Fetal infection after maternal reinfection with rubella. BMJ, 1989; 299: 1217
66. Pyzik M., Sand K.M.K., Hubbard J.J., et al.: The neonatal Fc receptor (FcRn): a misnomer? Front. Immunol., 2019; 10: 1540
67. Palmeira P., Quinello C., Silveira-Lessa A.L., Zago C.A., Carneiro-Sampaio M.: IgG placental transfer in healthy and pathological pregnancies. Clin. Dev. Immunol., 2012; 2012: 985 646
68. Niewiesk S.: Maternal antibodies: clinical significance, mechanism of interference with immune responses, and possible vaccination strategies. Front. Immunol., 2014; 5: 446
69. Malek A., Sager R., Kuhn P., Nicolaides K.H., Schneider H.: Evolution of maternofetal transport of immunoglobulins during human pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol., 1996; 36: 248–255
70. Ahmad S.M., Alam M.J., Khanam A., et al.: Vitamin A supplementation during pregnancy enhances pandemic H1N1 vaccine response in mothers, but enhancement of transplacental antibody transfer may depend on when mothers are vaccinated during pregnancy. J. Nutr., 2018; 148: 1968–1975
71. Plans P., de Ory F., Campins M., et al.: Prevalence of anti-rubella, anti-measles and anti-mumps IgG antibodies in neonates and pregnant women in Catalonia (Spain) in 2013: susceptibility to measles increased from 2003 to 2013. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 2015; 34: 1161–1171
72. Maertens K., Tran T.M.P., Hens N., Van Damme P., Leuridan E.: Effect of prepregnancy pertussis vaccination in young infants. J. Infect. Dis., 2017; 215: 1855–1861
73. Malek A., Sager R., Schneider H.: Transport of proteins across the human placenta. Am. J. Reprod. Immunol., 1998; 40: 347–351
74. Rastogi D., Wang C., Mao X., et al.: Antigen-specific immune responses to influenza vaccine in utero. J. Clin. Invest., 2007; 117: 1637–1646
75. Bundhoo A., Paveglio S., Rafti E., et al.: Evidence that FcRn mediates the transplacental passage of maternal IgE in the form of IgG anti-IgE/IgE immune complexes. Clin. Exp. Allergy, 2015; 45: 1085–1098
76. Kinder J.M., Stelzer I.A., Arck P.C., Way S.S.: Reply: breastfeeding-related maternal microchimerism. Nat. Rev. Immunol., 2017; 17: 730–731
77. Snoeck V., Peters I.R., Cox E.: The IgA system: a comparison of structure and function in different species. Vet. Res., 2006; 37: 455–467
78. Asano M., Komiyama K.: Polymeric immunoglobulin receptor. J. Oral. Sci., 2011; 53: 147–156
79. Pakkanen S.H., Kantele J.M., Moldoveanu Z., et al.: Expression of homing receptors on IgA1 and IgA2 plasmablasts in blood reflects differential distribution of IgA1 and IgA2 in various body fluids. Clin. Vaccine Immunol., 2010; 17: 393–401
80. Hanson L.A., Winberg J.: Breast milk and defence against infection in the newborn. Arch. Dis. Child., 1972; 47: 845–848
81. Schlaudecker E.P., Steinhoff M.C., Omer S.B., et al.: IgA and neutralizing antibodies to influenza a virus in human milk: a randomized trial of antenatal influenza immunization. PLoS One, 2013; 8: e70867
82. Gopalakrishna K.P., Macadangdang B.R., Rogers M.B., et al.: Maternal IgA protects against the development of necrotizing enterocolitis in preterm infants. Nat. Med., 2019; 25: 1110–1115
83. Sánchez-Salguero E., Mondragón-Ramírez G.K., Alcántara-Montiel J.C., et al.: Infectious episodes during pregnancy, at particular mucosal sites, increase specific IgA1 or IgA2 subtype levels in human colostrum. Matern. Health Neonatol. Perinatol., 2019; 5: 9
84. Gomez de Aguero M., Ganal-Vonarburg S.C., Fuhrer T., et al.: The maternal microbiota drives early postnatal innate immune development. Science, 2016; 351: 1296–1302
85. World Health Organization Exclusive Breastfeeding for Six Months Best for Babies Everywhere. 2011 Available online at: www.who.int/mediacentre/news/statements/2011/breastfeeding_20110115/en/ (accessed December 17, 2019)
86. Kinder J.M., Stelzer I.A., Arck P.C., Way S.S.: Immunological implications of pregnancy-induced microchimerism. Nat. Rev. Immunol., 2017; 17: 483–494
87. Loubiere L.S., Lambert N.C., Flinn L.J., et al.: Maternal microchimerism in healthy adults in lymphocytes, monocyte/macrophages and NK cells. Lab. Invest., 2006; 86: 1185–1192
88. Stelzer I.A., Triviai L., Solano M.E., Arck P.C.: Maternal microchimeric CD3+ T cells promote fetal hematopoiesis in fetal bone marrow in mice. J. Reprod. Immunol., 2016; 115: 81–82
89. Schenkel J.M., Fraser K.A., Beura L.K., et al.: T cell memory. Resident memory CD8 T cells trigger protective innate and adaptive immune responses. Science, 2014; 346: 98–101
90. Ariotti S., Hogenbirk M.A., Dijkgraaf F.E., et al.: T cell memory. Skin-resident memory CD8(+) T cells trigger a state of tissue-wide pathogen alert. Science, 2014; 346: 101–105
91. Touzot F., Dal-Cortivo L., Verkarre V., et al.: Massive expansion of maternal T cells in response to EBV infection in a patient with SCID-Xl. Blood, 2012; 120: 1957–1959
92. Sridhar S., Begom S., Bermingham A., et al.: Cellular immune correlates of protection against symptomatic pandemic influenza. Nat. Med., 2013; 19: 1305–1312
93. Edwards K.M.: Maternal antibodies and infant immune responses to vaccines. Vaccine, 2015; 33: 6469–6472
94. Zimmermann P., Perrett K.P., Messina N.L., et al.: The effect of maternal immunisation during pregnancy on infant vaccine responses. EClinicalMedicine, 2019; 13: 21–30
95. Maertens K., Caboré R.N., Huygen K., et al.: Pertussis vaccination during pregnancy in Belgium: follow-up of infants until 1 month after the fourth infant pertussis vaccination at 15 months of age. Vaccine, 2016; 34: 3613–3619
96. Munoz F.M., Bond N.H., Maccato M., et al.: Safety and immunogenicity of tetanus diphtheria and acellular pertussis (Tdap) immunization during pregnancy in mothers and infants: a randomized clinical trial. JAMA, 2014; 311: 1760–1769
97. Gans H.A., Arvin A.M., Galinus J., et al.: Deficiency of the humoral immune response to measles vaccine in infants immunized at age 6 months. JAMA, 1998; 280: 527–532
98. Dagan R., Amir J., Mijalovsky A., et al.: Immunization against hepatitis A in the first year of life: priming despite the presence of maternal antibody. Pediatr. Infect. Dis. J., 2000; 19: 1045–1052
99. Lagergard T., Trollfors B., Claesson B.A., Karlberg J., Taranger J.: Determination of neutralizing antibodies and specific immunoglobulin isotype levels in infants after vaccination against diphtheria. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1992; 11: 341–345
100. Mellander L., Carlsson B., Hanson L.A.: Secretory IgA and IgM antibodies to E. coli O and poliovirus type I antigens occur in amniotic fluid, meconium and saliva from newborns. A neonatal immune response without antigenic exposure: a result of anti-idiotypic induction? Clin. Exp. Immunol., 1986; 63: 555–561
101. Sacks D.L., Esser K.M., Sher A.: Immunization of mice against African trypanosomiasis using anti-idiotypic antibodies. J. Exp. Med., 1982; 155: 1108–1119
102. Reagan K.J., Wunner W.H., Wiktor T.J., Koprowski H.: Anti-idiotypic antibodies induce neutralizing antibodies to rabies virus glycoprotein. J. Virol., 1983; 48: 660–666
103. Kennedy R.C., Melnick J.L., Dreesman G.R.: Antibody to hepatitis B virus induced by injecting antibodies to the idiotype. Science, 1984; 223: 930–931
104. Stein K.E., Soderstrom T.: Neonatal administration of idiotype or antiidiotype primes for protection against Escherichia coli K13 infection in mice. J. Exp. Med., 1984; 160: 1001–1011
105. Jerne N.K.: Towards a network theory of the immune system. Ann. Immunol. (Paris), 1974; 125C: 373–389
106. Blanchard-Rohner G., Meier S., Ryser J., et al.: Acceptability of maternal immunization against influenza: the critical role of obstetricians. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med., 2012; 25: 1800–1809
107. MacDougall D.M., Halperin S.A.: Improving rates of maternal immunization: challenges and opportunities. Hum. Vaccin. Immunother., 2016; 12: 857–865
108. Benn C.S., Martins C.L., Andersen A., et al.: Measles vaccination in presence of measles antibody may enhance child survival. Front. Pediatr., 2020; 8: 20
Komentarz
dr hab. n. med. Iwona Sadowska-Krawczenko, prof. UMK
Katedra Neonatologii Collegium Medicum w Bydgoszczy Uniwersytetu im. Mikołaja Kopernika w Toruniu
Komentowany artykuł podejmuje niezwykle ważny i aktualny
temat. Szczepienia kobiet przed ciążą i w trakcie
jej trwania spełniają istotną rolę w budowaniu odporności u noworodków i małych niemowląt, których układ
odpornościowy jest niedojrzały, a możliwości podania
szczepionek (np. niektórych „żywych”) są ograniczone.
Wydaje się, że poszerzenie zakresu szczepień u kobiet
planujących ciążę i będących w ciąży daje wielkie możliwości w zakresie zapobiegania zachorowaniom na choroby
zakaźne. Zagadnieniem wymagającym dalszych badań
jest wpływ szczepień podawanych kobiecie w ciąży
na odpowiedź dziecka na szczepienia podawane mu
we wczesnym okresie życia. Wyniki niektórych badań
wskazują, że odpowiedź immunologiczna jest u takich
dzieci osłabiona. Interesujące będzie również dokładne
wyjaśnienie mechanizmów przekazywania odporności
przez matkę na dziecko, bo jak wiadomo, nabywanie
odporności związane jest zarówno z biernym przekazywaniem
przeciwciał, jak i swoistych limfocytów T.
Jak słusznie zauważyły autorki opracowania, aktualnie
kobiety rodzą swoje pierwsze dzieci w znacznie starszym
wieku niż kilkadziesiąt lat temu, dlatego należy pamiętać,
że są one słabiej chronione przez szczepienia wykonane w dzieciństwie. Kobieta planująca ciążę powinna się zaszczepić
przeciwko śwince, odrze, różyczce, ospie wietrznej i wirusowemu zapaleniu wątroby typu B. Natomiast
zgodnie z aktualnym Programem Szczepień Ochronnych w Polsce zaleca się szczepić kobiety ciężarne przeciwko
krztuścowi oraz grypie. Dokładne dane dotyczące realizacji
tego zalecenia nie są znane. Nieliczne dane oraz
własne obserwacje wskazują, że zalecenia te są bardzo
słabo realizowane.
Szczepienie kobiet w ciąży przeciwko COVID-19
Aktualnym problemem zdrowotnym na świecie jest
pandemia COVID-19. Wprowadzenie szczepień dało
nadzieję na zahamowanie rozprzestrzeniania się wirusa
oraz ochronę przed zakażeniem i ciężkim przebiegiem
choroby. Początkowo kobiety ciężarne nie były szczepione,
gdyż obawiano się negatywnych konsekwencji
dla rozwijającego się płodu. Wątpliwości dotyczyły również szczepienia kobiet w trakcie laktacji. Zebrane dotąd
dane wskazują jednak na korzyści ze szczepienia. Kobiety
ciężarne należą do grupy zwiększonego ryzyka ciężkiego
przebiegu zakażenia wirusem SARS-CoV-2,
częściej wymagają hospitalizacji, wentylacji mechanicznej oraz
utlenowania pozaustrojowego (ECMO).1 Ten ciężki przebieg
kliniczny choroby jest niebezpieczny zarówno dla
kobiety, jak i rozwijającego się płodu. Personel oddziałów
noworodkowych wielokrotnie spotyka się z noworodkami
urodzonymi przedwcześnie z powodu zachorowania
matki na COVID-19. Niestety część przypadków kończy
się niepomyślnie dla matki, a wcześniactwo oraz niedotlenienie
płodu związane z ciężkim stanem kobiety
ciężarnej daje trwałe konsekwencje zdrowotne u dziecka.
Zgodnie z aktualnymi wytycznymi towarzystw naukowych,
również polskich, oraz komitetów doradczych zaleca
się szczepienie przeciwko COVID-19 zarówno kobiet w ciąży, jak i karmiących piersią.
Co wiadomo o bezpieczeństwie szczepienia?
Analiza zdarzeń niepożądanych po szczepieniu przeciwko COVID-19 (Pfizer-BioNTech, Moderna) w grupie >35 000 kobiet w różnym okresie ciąży (2% – okres okołokoncepcyjny, 29% – I trymestr, 43% – II, 26% – III) nie wykazała częstszego występowania działań niepożądanych, w porównaniu z kobietami niebędącymi w ciąży. Nie stwierdzono również niekorzystnych następstw dla noworodków, chociaż dotychczas uzyskane dane są ograniczone do niewielkiej grupy dzieci urodzonych przez kobiety zaszczepione głównie w III trymestrze ciąży.2 W innym badaniu nie stwierdzono różnic w badaniu histologicznym łożyska przeprowadzonym u 84 kobiet zaszczepionych przeciwko COVID-19 i 116 niezaszczepionych.3 W grupie zaszczepionej nie obserwowano m.in. częstszego występowania zapalenia kosmków łożyska ani zaburzeń dotyczących naczyń doczesnej.
Czy szczepienie kobiet w ciąży przeciwko COVID-19 jest skuteczne?
Kobiety w ciąży odpowiadają na szczepienie podobnie jak kobiety niebędące w ciąży, a miana przeciwciał są większe u kobiet zaszczepionych niż tych, które w trakcie ciąży przebyły zakażenie SARS-CoV-2.4 Poza ochroną kobiety ciężarnej przed zachorowaniem, potwierdzono transfer przeciwciał do noworodka, co może je ochronić przed infekcją.5,6
Czego jeszcze nie wiadomo?
Nadal nie ustalono, w którym okresie ciąży najlepiej podać szczepionkę przeciwko COVID-19. Warto zwrócić uwagę, że również w przypadku szczepienia przeciwko krztuścowi strategie są różne, gdyż amerykański Advisory Committee on Immunization Practices (ACIP) zaleca to szczepienie miedzy 27. a 36. tygodniem ciąży (tak jak w Polsce), a brytyjski National Health Service (NHS) między 16. a 32. tygodniem ciąży. Opierając się na dostępnych danych, należy się zastanowić, czy nie warto zmienić zaleceń w Polsce. Byłoby to korzystne dla dzieci, które rodzą się przedwcześnie. Dodatkowo część badań wskazuje na lepszą odpowiedź immunologiczną w przypadku wcześniejszego podania szczepionki przeciwko krztuścowi. Być może podobnie będzie ze szczepieniem przeciw COVID-19. Niektórzy autorzy sugerują, że optymalnym momentem na szczepienie przeciwko COVID-19 jest początek II trymestru.7
Zalecenia obowiązujące w Polsce
W kwietniu 2021 roku ukazało się stanowisko Polskiego
Towarzystwa Ginekologów i Położników (PTGP), zgodnie z którym ciężarnym i kobietom karmiącym piersią należy
proponować szczepienie przeciwko COVID-19. W dokumencie czytamy, że nie ma danych na temat szkodliwego
wpływu szczepionki na rozwój płodu od momentu
zapłodnienia, jednak autorzy sugerują, aby szczepienie
wykonać po okresie organogenezy, o ile nie ma do niego
pilnych wskazań. Zalecają również, aby każdy przypadek
szczepienia kobiety w ciąży konsultować z lekarzem położnikiem
prowadzącym ciążę. Ze względu na zdecydowanie
większą liczbę obserwacji i badań dotyczących
bezpieczeństwa szczepienia kobiet ciężarnych szczepionkami
mRNA eksperci PTGP wskazują, że są one preferowane w tej grupie pacjentów.8
Podsumowując, warto powtórzyć za autorkami
artykułu, że największym wyzwaniem jest zwiększenie
realizacji szczepień kobiet planujących ciążę i będących w ciąży, dlatego istnieje potrzeba ciągłej edukacji w tym zakresie.
Piśmiennictwo do komentarza:
1. Zambrano L.D., Ellington S., Strid P. i wsp.: Update: characteristics of symptomatic women of reproductive age with laboratory confirmed SARS-CoV-2 infection by pregnancy status – United States, January 22–October 3, 2020. MMWR, 2020; 69: 1641–16472. Shimabukuro T.T., Kim S.Y., Myers T.R. i wsp.; CDC v-safe COVID-19 Pregnancy Registry Team: Preliminary findings of mRNA Covid-19 vaccine safety in pregnant persons. N. Engl. J. Med., 2021: NEJMoa2104983. doi: 10.1056/NEJMoa2104983 (w druku)
3. Shanes E.D., Otero S., Mithal L.B. i wsp.: Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) vaccination in pregnancy: measures of immunity and placental histopathology. Obstet. Gynecol., 2021; doi: 10.1097/AOG.0000000000004457 (w druku)
4. Gray K.J., Bordt E.A., Atyeo C. i wsp.: Vaccine response in pregnant and lactating women: a cohort study. medRxiv (Preprint). 2021; 8:2021.03.07.21253094. doi: 10.1101/2021.03.07.21253094. Update in: Am. J. Obstet. Gynecol., 2021; PMID: 33 758889 (w druku)
5. Paul G., Chad R.: Newborn antibodies to SARS-CoV-2 detected in cord blood after maternal vaccination – a case report. BMC Pediatr., 2021; 21: 138
6. Rottenstreich A., Zarbiv G., Oiknine-Djian E. i wsp.: Efficient maternofetal transplacental transfer of anti- SARS-CoV-2 spike antibodies after antenatal SARS-CoV-2 BNT162b2 mRNA vaccination. Clin. Infect. Dis., 2021: ciab266. doi: 10.1093/cid/ciab266 (w druku)
7. Munoz F.M.: Can we protect pregnant women and young infants from COVID-19 through maternal immunization? JAMA Pediatr., 2021; 175 (6): 561–562
8. Stanowisko PTGiP dotyczące szczepień kobiet ciężarnych przeciwko COVID-19. 26.04.2021. www.ptgin.pl/sites/default/files/aktualnosci/PTGIP%20SZCZEPIENIA%20CI%C4%98%C5%BBARNYCH_1.pdf